Трихофития лечение у собак в москве: как определить в домашних условиях, лечение, признаки

Содержание

Лишай у кошек и котов

Лишай, или дерматофития — такое название получила обширная группа широко распространенных дерматологических заболеваний вирусного или грибкового характера, сопровождающихся появлением мелкой узелковой сыпи, вызывающей зуд.

Лишай — заразная болезнь, которая передается не только другим животным, но и людям. Особенно часто страдают от нее дети. Поэтому не стоит игнорировать проблему. При появлении даже незначительной сыпи покажите домашнего любимца ветеринару.

Качественное лечение по доступной цене вам предложат в зооветеринарном центре «АМИКУС ВЕТ».

Лишай – это общее название группы заболеваний кожи вызванных грибками.

Самые распространённые возбудители это — микроспория ( Microsporum canis), трихофития (Trichophyton tonsurans). Симптомы заболеваний похожи. Трихофитией и микроспорией болеют люди и животные. Заразиться можно при контакте с больным животным , а также через предметы ухода за питомцем.

Симптомы лишая должны быть известны любому заботливому владельцу, поскольку возбудители широко распространены в природе и находятся в земле , старой шерсти , на подстилках или одежде. Животные могут быть носителями грибка, без проявления клинической картины заболевания. Пристального внимания требуют следующие симптомы:

  • Выпадение шерсти в период между линьками.
  • Появление на коже участков без шерсти.
  • Появление зуда и расчёсанных пятен на коже.
  • Медленное обрастание животного после линьки.
  • Перхоть.

Основная причина лишая у животных – снижение иммунитета и нарушение микрофлоры кожных покровов. Важно заметить заболевание как можно раньше, если начать лечение при появлении первых симптомов лишая, с болезнью удастся справиться на много быстрее. Поэтому при проявлении каких либо признаков лишая необходимо обратиться в ветеринарную клинику.

Только после осмотра животного специалистом и лабораторных исследований, можно поставить диагноз и назначить лечение.

Лишай у животных

Лишай — это заболевание, которое может передаваться от питомцев человеку. Заболевание очень распространено повсеместно. Часто заболевают стригущим лишаем те животные, которые выходят на прогулку и при контакте с больным, через предметы и вещи, а иногда домашним питомцам может принести споры грибов с улицы хозяин, так как они очень живучи. Болеют лишаем домашние, дикие, сельскохозяйственные, пушные звери.

Вызывают эту болезнь грибы, поэтому и названия могут встречаться такие, как Микроспория и Трихофития, в зависимости от рода грибов. Это заболевание опасно, длительно по течению и с последствиями после выздоровления (облысение участков кожи и пигментация). Попав на кожу споры грибка поражают её, разрастаются в эпидермисе, шерсти и волосяных фолликулах, вследствие чего начинается воспалительный процесс.

Наблюдается выпадение волос, образование корочек, изменение пигментации, шелушение, воспаление, покраснение и зуд. Чаще всего поражения видны на голове, ушах, хвосте, лапах. Скорость поражения зависит от состояния организма, быстро происходит при пониженном иммунитете, трещинах на коже, скудном питании, скученном содержании. Инкубационный период 5-15 дней.

Если у хозяина появилось подозрение, что у его питомца лишай, нужно обратиться к ветеринарному врачу, сдать лабораторные анализы (соскоб и шерсть) и осмотреть животное с помощью лампы Вуда (при поражении будет зелёное свечение). Лучше всего вызвать врача на дом, чтобы не заразить пациентов в клинике. Ни в коем случае нельзя до осмотра доктора пораженное место чем либо мазать. Так же самолечение опасно тем, что вы можете заразиться сами.

Лечение комплексное, наружная обработка, дача противогрибковых препаратов и введение вакцины. Желательно больного изолировать от здоровых, повышать иммунитет и следить за личной гигиеной. После проведённого курса лечения желательно сдать повторно анализы. При подозрении на лишай обращайтесь к нам, мы поможем вылечить эту болезнь без серьёзных последствий.

Главное, обратиться вовремя не затягивая и откладывая на завтра. Здоровья вам и вашим питомцам!

Микроспория у детей — причины, симптомы, диагностика и лечение микроспории у детей в Москве в детской клинике «СМ-Доктор»

ПОЛУЧИТЬ КОНСУЛЬТАЦИЮ Содержание:
Описание заболевания
Симптомы
Причины
Диагностика
Лечение
Профилактика Микроспория (лишай) – инфекционное заболевание кожи грибковой природы, вызываемое грибками рода Microspirum. Лечением заболевания занимается врач-дерматолог.

Описание заболевания

Микроспория признана наиболее часто встречаемым среди детей грибковым заболеванием. Пик заболеваемости приходится на конец лета и начало осени. Источниками инфекции являются больные люди и животные (чаще кошки). Существует 2 вида возбудителей микроспории – антропонозные и зооантропонозные штаммы. Первые опасны только для человека, вторые – заражают человека и животных.

У детей существует естественная склонность к микроспории. Это связано с тем, что в детском возрасте отличается состав секретов потовых и сальных желез. У взрослых в секрете присутствует много жирных кислот, которые губительны для грибка. У детей защитная функция кожи слабая, поэтому они больше подвержены дерматофитиям.

Грибок микроспорум способен поражать гладкую кожу, волосы, крайне редко прорастает в ногти. Продукты его жизнедеятельности обладают токсическими свойствами, поэтому провоцируют воспаление на коже, шелушение, зуд. При поражении волосистых частей тела грибок вторгается в луковицы, затем поражает волос по всей длине, провоцирует ломкость, выпадение.

Профилактика заболевания осуществляется на государственном уровне. Заболевшего необходимо изолировать от здоровых людей на 35 дней. Грибок распространяется вместе с чешуйками, отслоившимися от кожи. Риск развития микроспории выше для детей следующих категорий:

  • слабый иммунитет;
  • ссадины, царапины, ранки на коже;
  • авитаминоз;
  • патологии эндокринной системы;
  • неблагополучная семейная обстановка.

Симптомы микроспории

Главным симптомом микроспории являются характерные высыпания на коже. В зоне проникновения в кожу грибка появляется красное пятно с приподнятыми краями. По мере размножения возбудителя оно расширяется, внешне напоминает кольцо. Внутри высыпания кожа обычного или бледно-розового цвета, покрыта мучнистым налетом или шелушится с отслоением корочек. По периметру пятна могут быть красноватые пузырьки или узелки. Возможен умеренный зуд кожи в области высыпания. При массивном обсеменении появляется сразу несколько пятен, которые со временем сливаются между собой. Чаще всего высыпания появляются на руках, предплечьях, плечах, шее, ногах.

При заражении от животных поражаются волосистые участки кожи на голове. Пораженные волосы обламываются на расстоянии 3-5 мм от поверхности кожи, оставляя после себя «пеньки». По мере распространения грибка на голове ребенка образуются округлые участки облысения. Пораженная грибком зона может зудеть. Местный иммунитет здесь нарушен, поэтому возможно вторичное инфицирование очагов с развитием воспаления, в т.ч. гнойного. Нередко дети расчесывают пораженные участки, провоцируя мокнутие кожи.

Причины микроспории

Ребенок может столкнуться с возбудителем где угодно. Инфицирование зооантропонозными штаммами происходит при контакте с бездомными животными. Кошки переносят микроспорию чаще собак. Высыпания появляются в зоне прямого контакта с больным животным (там, где кошка потерлась). Антропонозные штаммы переносят люди. Достаточно, чтобы инфицированные чешуйки попали на кожу здорового малыша. Заразиться можно в детском саду, общественном транспорте. Грибок передается через бытовые предметы. Чаще всего дети заражаются от взрослых, при использовании общего полотенца.

Диагностика микроспории

Врачи-дерматологи «СМ-Доктор» имеют огромный опыт в диагностике и лечении микроспории у детей. Специалисты много внимания уделяют общему состоянию здоровья маленького пациента, чтобы выявить предрасполагающие к болезни факторы. При комплексном подходе от микроспории можно быстро избавиться.

Диагноз ставит врач-дерматолог, опираясь на данные клинической картины. Как правило, в анамнезе имеются сообщения о пребывании в деревне или контакте с бездомным животным на улице. Подтвердить диагноз позволяет обследование с лампой Вуда (очаги светятся зеленым). Для оценки общего состояния организма назначают общий и биохимический анализы крови. Для уточнения вида грибка проводят исследование соскоба и посев на питательную среду.

Лечение микроспории

Микроспория у одного ребенка может привести к настоящей вспышке заболевания внутри семьи или детского коллектива, поскольку патология очень заразная. К лечению нужно приступать незамедлительно. Важно, чтобы его подобрал врач, поскольку терапия отличается от случая к случаю. Врачи «СМ-Доктор» подбирают лечение в индивидуальном порядке, учитывая общее состояние маленького пациента и имеющиеся у него сопутствующие заболевания.

Лечение микроспории гладкой кожи подразумевает наружное применение противогрибковых средств. При выраженном воспалении назначают мази и кремы с комбинированным составом (противогрибковый + противовоспалительный компонент). Обработку наружными антимикотиками чередуют со смазыванием раствором йода.

При поражении пушковых или длинных волос только наружными средствами не обойтись. Назначают противогрибковые препараты системного действия (в виде таблеток или капсул). Лечение дополняют мазями. Показано сбривание волос и мытье головы противогрибковыми шампунями. Лечение длится от 2 до 6 недель.

На время лечения ребенок должен быть изолирован. Все личные и бытовые предметы подлежат дезинфекции. После выздоровления пациент должен проходить диспансерное наблюдение, поскольку микроспория может рецидивировать.

Профилактика микроспории

Чтобы предотвратить микроспорию у детей, необходимо с раннего детства приучать их мыть руки по приходу домой, после туалета, после посещения общественных мест, перед приемом пищи, после контакта с животными. Необходимо ограничить контакты малыша с бездомными животными. При наличии кошек и собак дома, следует регулярно их консультировать у ветеринара. Если дома появился больной микроспорией, нужно ежедневно проводить дезинфекцию (стирать вещи, полотенца, покрывала, протирать поверхности раствором хозяйственного мыла и соды).

Врачи «СМ-Доктор» специализируются на лечении детских патологий. Заботливое отношение, комплексный подход и профессиональный контроль всех этапов лечения позволит вашему малышу выздороветь в самые короткие сроки!


Врачи:

Детская клиника м.Марьина Роща Записаться на прием Детская клиника м.Войковская Записаться на прием Детская клиника м.Новые Черемушки

Халиф Айгуль Юлаевна

Детский дерматолог, детский миколог, детский трихолог, врач высшей категории, к.м.н.

Ручкина Юлия Владимировна

Детский дерматолог, детский миколог, детский трихолог

Хлямина Майя Артуровна

Детский дерматолог, детский миколог, детский трихолог

Викулова Юлия Вячеславовна

Детский дерматолог, детский миколог

Олейникова Юлия Витальевна

Детский дерматолог, детский миколог

Записаться на прием Детская клиника м.Текстильщики

Бозунов Алексей Викторович

Детский дерматолог, детский миколог

Королькова (Симонович) Полина Аскольдовна

Детский дерматолог, детский трихолог, детский миколог

Зуева Ксения Михайловна

Детский дерматолог II категории, детский миколог, детский трихолог

Рязанцев Вячеслав Викторович

Детский дерматолог, детский миколог, к.м.н.

Чекрыгина Марина Вячеславовна

Детский дерматолог, детский миколог, врач высшей категории. Заместитель главного врача в детском отделении на Волгоградском проспекте

Смолева Мария Борисовна

Детский дерматолог высшей категории, детский миколог, детский трихолог, детский косметолог

Записаться на прием Детская клиника м.Молодежная

Дидорук Виталий Александрович

Детский дерматолог, детский миколог

Догов Альберт Мухамедович

Детский дерматолог, детский миколог, детский трихолог

Громов Михаил Сергеевич

Детский дерматолог, детский миколог

Аршинова Дарья Юрьевна

Детский аллерголог-иммунолог, детский дерматолог, детский миколог

Юрченко Эльмира Валиахмедовна

Детский дерматолог, детский трихолог

Гаранина Ирина Юрьевна

Детский дерматолог, детский миколог, детский трихолог, врач I категории

Записаться на прием Детская клиника м.Чертановская Записаться на прием Детская клиника в г.Солнечногорск, ул. Красная

Жукова Кристина Игоревна

Детский дерматолог

Записаться на прием

Записаться на прием

Мы гарантируем неразглашение персональных данных и отсутствие рекламных рассылок по указанному вами телефону. Ваши данные необходимы для обеспечения обратной связи и организации записи к специалисту клиники.

Цены на лечение стригущего лишая у кошек в ветеринарной клинике в Нижнем Новгороде

«Хочу выразить благодарность Карезиной Марии Юрьевне! А так же ассистенту данной клиники! Это специалисты высокого класса! Оказали неотложную помощь нашей кошке в короткий срок. Успокоили не только питомца, но и нас. После операции все доходчиво объяснили, жали ценные советы. Теперь по любому вопросу — только к этому доктору. Цены очень адекватные!

Алёна

«Были на операции стерилизации на пр.Октября нас принимала врач Александра. Перед операцией нас осмотрели и все подробно рассказали, так же сделали скрытый шов (его не надо снимать), что гораздо лучше для животного и в клинику на снятие возить не надо. Уже через пару дней сняли бандаж и кошку чувствовала себя прекрасно. Большое спасибо, всем рекомендую!!!

Ирина

«В конце ноября стерилизовали нашу кошку Ясю в этой клинике. Очень переживали, т.к характер у питомицы своенравный. Врачи нашли подход к нашему буйному зверю и грамотно проконсультировали по всем нашим многочисленным вопросам. Мы остались довольны обслуживанием и хотим выразить благодарность всему персоналу клиники!

Евгения

«Хотим выразить благодарность врачу клиники на Родионова Шатаровой Н.А.
Посещаем клинику несколько лет, и благодаря профессионализму и неравнодушному отношению Нины Александровны, была оказана помощь нашим животным. Плюс ко всему, Нина Александровна никогда не откажет в консультации по телефону. Благодарность Вам от нас и нашей чихуахуа Алисы.

Елена

«Доброго дня! Хотим выразить благодарность врачу клиники на Родионова Шатаровой Н.А.
Посещаем клинику несколько лет, и благодаря профессионализму и неравнодушному отношению Нины Александровны была оказана помощь нашим животным. Плюс ко всему, Нина Александровна никогда не откажет в консультации по телефону. Благодарность Вам от нас и нашей чихуахуа Алисы.

Елена

«Спасибо вам огромное, Екатерина Юрьевна и остальным девочкам!
Екатерина Юрьевна очень хороший специалист! Все делала аккуратно! Переживала за мою собаку, как за свою! Очень советую!

Анна

«Отдельная благодарность врачу Ростовщиковой Ирине Юрьевне за спасённую жизнь нашего любимца Дика. Большое Вам СПАСИБО!!!

Владимир

«Выражаю ОГРОМНУЮ БЛАГОДАРНОСТЬ врачу Беловой Ольге Сергеевне !!! Очень добрый и любящий животных человек !!!
06.06.2018 года обратились впервые в данную ветклинику на кастрацию котика. Ольга Сергеевна сразу произвела на нас положительное впечатление, как человек знающий и любящий свою профессию. Вопрос о том, в чьи руки отдать своего питомца на операцию, отпал сам собой !!! Спасибо Вам огромное, Ольга Сергеевна !!!

Елена

«Были на операции стерилизации на пр.Октября нас принимала врач Александра. Перед операцией нас осмотрели и все подробно рассказали, так же сделали скрытый шов (его не надо снимать), что гораздо лучше для животного и в клинику на снятие возить не надо. Уже через пару дней сняли бандаж и кошку чувствовала себя прекрасно. Большое спасибо, всем рекомендую!!!

Ирина

«Хорошая клиника, постоянно ходили к Анне Валерьевне. Жаль, что её перевели. Придётся искать другого специалиста.

Дмитрий

«Были на стерилизации кошки в клинке на Бекетова 15, врач Анохина Екатерина Юрьевна. Очень понравился профессиональный подход к работе и чуткое отношение к любимцу всей семьи. Огромное вам спасибо, всех благ и процветания!

Василий

«Отдельная благодарность врачу Ростовщиковой Ирине Юрьевне за спасённую жизнь нашего любимца Дика. Большое Вам СПАСИБО!!!

Владимир

«Хочу выразить огромную благодарность работникам филиала на Бекетова, а особенно врачу Сизгиновой М.Г. за высокий профессионализм, чуткость, терпение, проявленное при лечении нашей уже не молодой (9 лет) любимицы — кошки Маши. Спасибо Вам огромное, наша киска чувствует себя превосходно. Теперь мы Ваши постоянные клиенты!

Ольга

«Выражаем огромную благодарность Беловой Ольге Сергеевне. Спасибо за ваш профессионализм и неравнодушие!

Светлана

«Были 14.12 на приеме у Шатаровой Нины Александровны с собакой — француз.бульдог. Мы атопики, и побывали вероятно уже во всех клиниках Нижнего, в поисках хорошего врача, чтобы не драли из кармана бешенные суммы и лечили адекватно.. Врач нас консультировала около часа, брала мазки, шерсть..все детально рассказала о причинах возможных и как с этим теперь жить, подобрали питание, лекарства недорогие..вообщем мы теперь с Лордом только туда.. ему так очень понравилось.. и девушка регистратор и сама доктор) Спасибо за прием, девочки!

Анастасия Григорьева

«Были на операции стерилизации на пр.Октября нас принимала врач Александра. Перед операцией нас осмотрели и все подробно рассказали, так же сделали скрытый шов (его не надо снимать), что гораздо лучше для животного и в клинику на снятие возить не надо. Уже через пару дней сняли бандаж и кошку чувствовала себя прекрасно. Большое спасибо, всем рекомендую!!!

Ирина

«Оставляли двух кошечек в гостинице на время своего отпуска. Кошки старенькие, 17 и 16 лет, никогда никому их не отдавали, во время отпусков они всегда оставались дома и их кормили наши бабушки. То есть из привычной обстановки кошек забрали впервые. Очень переживали как всё пройдёт… Всё прошло хорошо, получали фотографии своих питомцев 🙂 По приезду домой кошки быстро адаптировались к родной обстановке. Выражаем большую благодарность кошачьему отелю Кот Матроскин и лично администратору Плетнёвой Марине!

Алексей

«Хотелось бы выразить огромную благодарность врачу ветеринарной клиники «Кот Матроскин» Лопатиной А.А. Александра Андреевна быстро выявила причину заболевания у нашей кошки. Это оказался банальный лишай, но она назначила максимально действенное лечение, которое помогло нашей любимице в кратчайшие сроки. За время лечения мы неоднократно приходили на контроль, который не выявил образования новых очагов. Меньше месяца и кошечка здорова. Огромное спасибо Лопатиной А.А.- мастеру своего дела.

Роман

«Хочу выразить огромную благодарность и признательность всему коллективу клиники на ул. Кировская д. 8а. Недавно мы сделали три операции нашим котикам. Делали кастрацию котику, а также стерилизации кошке и котенку, и пластику носика котенку. Очень переживали, но благодаря опыту и профессионализму врачей все прошло замечательно. Оперировал врач Тасойти Я.З. Будем всем рекомендовать данную клинику.

Яна

«Выражаю огромную благодарность офтальмологу Якобу Зелимовичу за лечение нашего стаффордширского бультерьера. Обратились в «Кот Матроскин» после безрезультативного, дорогого, многомесячного посещения другой клиники, где от дальнейшего лечения отказались, категорично заявив, что «глаз можно спасти только сложной и дорогостоящей операцией в Москве, в нашем городе точно никто не поможет!»
Сейчас уверенно могу сказать, что высококлассные специалисты есть и у нас, все обошлось без операции и глаз удалось сохранить! Хочется отметить, что доктор очень доступно объясняет какие этапы лечения мы проходим и для чего необходимо каждое лекарство. Из-за потерянного времени нам предстоит еще длительное лечение, но глаз открыт и видит!
Были в филиалах на Родионова и Кировской, приём по времени, доброжелательный персонал, никакого навязывания дорогущих препаратов или услуг.
Спасибо за Вашу работу!

Светлана

«Обратились в первый раз, стригли кошечку от колтунов. Большое спасибо! Так чудно постригли, теперь у нас молоденькая львица!

Татьяна

«Хочется оставить много слов благодарности Марии Карезиной.Прекрасный,чуткий и очень любящий животных врач и специалист своего дела!Трепетно относится к каждому четвероногому другу,очень внимательна!Моя кошка не чувствовала ни грамма волнения рядом с ней,животные всё чувствуют.А так же спасибо её ассистенту Дарье Беловой за нежность,отношение и за заботу!Вы огромные молодцы и спасибо вам за ваш труд!

Елена

«Выражаем огромную благодарность всему персоналу клиники на Кировской 8А за нашего Кузю. Уже 2й раз мы оставляли его в гостинице в этом филиале больше чем на 10 дней. Сначала очень переживали. как все пройдет,но наши опасения были напрасны. Кузя остался очень доволен и даже не хотел уезжать из гостиницы-так полюбил всех.кто за ним ухаживал-и врачей.и администратора и ассистентов врачей. Команда очень профессиональная и доброжелательная. Всем огромное спасибо, обязательно вернемся к Вам еще. Кузя передает привет.

Елена

«Хочу выразить огромную благодарность врачам Наталье Игоревне и Роману (отчества не запомнила) за стерилизацию кошки 17.12.18 на Бекетова
При мне осмотрели кошечку и сделали наркоз, забрала ее только вечером, кошка прекрасно себя чувствовала. Думали, что будет отходить от наркоза лежа, но уже под утро кошка покушала и сама сходила в латок.
А отзывы есть про плохою чистоту и стерильность клиники — это чушь. Во многих человеческих больницах не такой порядок как там. Ничего прям ужасного я не заметила 🙂 Спасибо еще раз!!!

лиза

«Наш любимый доктор Белова Ольга Сергеевна. Большой профессионал своего дела!!!! Всегда грамотно подбирает лечение. Самый лучший ветеринар!

Анна

«Были здесь первый раз 21.12.19 с щенком чихи в 2 месяца,сделали комплексную прививку, всё на высшем уровне ещё и коготочки подстригли бесплатно.Спасибо.

Алексей

«У моего кота в начале мая 2019 года появивлась
эрозия на левом глазу. Сначала глаз был прищурен (такое было и раньше ,так как у меня два кота и они частенько дерутся) Ну прищурен и прищурен,стали по привычке капать капли ИРИС. Капаю дня три,вижу,что не помогоает. Еду в клинику № 1 (не буду наговаривать ни на кого,но поверьте- это КИНО. В клинике №1 мне выписывают ципровет.
Капаю несколько дней ,нет улучшения. В какой то момент вижу на роговице (как мне тогда показалось) как будто волосок прилип ,пытаюсь ЕГО убрать-нифига. Звоню в клинику около моего дома,назовем ее №2. На мой вопрос: «а могут ли они убрать из глаза у кота прилипший волос ,мужской голос говорит мне ВНИМАНИЕ!!! : «Это только под наркозом,сами понимаете,это же глаз»
Я чуть со стула не упал. Позвонил в клинику № 1 и рассказал о «волосе»/ дальше поехал к ним. Они вымывали,терли бинтом ,»волос » не смывался.
Тогда врач выдала мне следующее: (орфография и все слова сохранены): «Это царапина на роговице.Ничего страшного,заживет,глаз помутнеет,рана зарубцуется и ,скорее всего кот на один глаз ослепнет» И ДОБАВИЛА:»Ничего, с одним глазом и люди живут» . Кино продолжается. Назначила нам капли и уколы (для рассасывания)
Полечились дня три. Ноль эффекта. Глаз не открывается. Короче , рою интернет,ищу светилу по офтальмологии. Нахожу. Девочка лет 25. Приезжаю в клинику№3 . Нам отменяют капли и уколы из клиники №1. назначают много всяких капель,уколов,таблеток.
Берут из ДВУХ!!! лап много крови. Делают из нее +какое то лекарство ЛЕКАРСТВО,путем смешивания в каком то аппарате. Ставят нам предв.диагноз -эрозия роговицы. Дальше мы около трех недель лечимся. Приезжаем раз в неделю,капаем глаз видимо обезболивающим,чистим его от мертвого эпителия.Кот орет на всю округу(забегая вперед хочу обвинить этого врача в неопытности,потому как позже я узнал ,что после каплей надо минут 5 хотя бы подождать,что бы обезболивание подействовало) Короче,через три недели девочка предложила нам зашить третье веко. И тут я решил еще попытать судьбу. Сразу скажу,что однажды я потерял кота ( в 2011году) и не смотря на то,что мне так и хочется до сих пор обвинить врача и сказать ,что клиника ТАКАЯ ТО говно и врачи такие же,но все таки не могу прям вот про всю клинику говорить. И вот глаз у нас помутнел,не открывается. Зрелище жалкое. Мы с семьей уже два месяца без малого места себе не находим. И тут я в интернете нахожу информацию о враче офтальмологе из кота матроскина. Лечились долго.
Капали капли по 6-8 раз в день по четыре вида капель+уколы и таблетки. Глаз оброс сосудами .
Если честно ,я уже начал отчаиваться.
Глаз не смотря на два с половиной месяца «убойного» лечения превратился в мутный ,почти закрытый, с сеткой вросших в роговицу сосудов. В какой то момент доктор даже сказал: «я даже не знаю,что еще придумать» В этот момент стало совсем хреново. И вот последние две недели,мы увидели ,что стало налаживаться. Эрозия рассосалась. Роговица появилась (ее стало видно,зрачек в смысле) Хоть и сосуды еще частично видны и пленка мутная краешек осталась,но это все ни в какое сравнение не идет с тем,что было. И хоть мы еще лечимся и у нас прием еще через неделю, я впервые за два с половиной месяца вижу кота НЕ ПИРАТА и глаз уже в разы лучше. Я называю это победой. Не буду петь хвалебных ОД. Скажу по простому ,врач Тасойти Якоб Зелимович спас нам глаз и огромное спасибо!!!

Алексей

«Пришли с собакой с жалобами на боль в ухе. Врач взяла анализы и на следующий день перезвонила сама и назначила лечение. Все прошло хорошо, прокапали, и запах прошел, и выделения… Врач перезвонила спустя неделю и еще раз поинтересовалась здоровьем собаки… Спасибо..

Марина

«Добрый день! Спасибо специалистам этой клиники! Долго не могли вылечить кота от лишая. По мимо основного лечения, доктор посоветовал обработать дом средством Тристел фьюз для поверхностей. Оказывается важно не только кота вылечить, но и дом обработать. Что бы предотвратить повторные заражения. После обработки процесс выздоровления заметно ускорился.

Евгений

«Здравствуйте!
Хотел бы поблагодарить персонал клиники на у.Кировская за внимательное и чуткое отношение к моей кошке. Мы были у вас на приеме 5 ноября (врач Мария Юрьевна и помощница Алёна) — кошку Марго стерилизовали, думаю вы нас вспомните) Все на уровне: и консультацию дали , и что лучше сдать анализы перед операцией..вообщем от , как говориться и до…после операции поведали как ухаживать, на что внимание обратить , про питание и корма.. Девчата — молодцы! По ценам — не дорого и не дешево — среднее что-то..но скупой платит дважды..Принесем к вам кота, в скором времени) СПАСИБО !!

Василий

«День добрый!
Вчера были на приеме у врача Анохиной Екатерины Юрьевны — очень внимательный доктор..Котик у нас старенький, пенсионер уже..14лет..и болячек полный букет..Катерина Юрьевна всегда нам уделяет много времени, всего кота посмотрит и глаза и уши, и лапы..и про когти напомнит, что стричь нужно…очень добрый врач! И лекарства если назначает то приемлемые по цене..не за 2тыс , как в других клиниках..Хотя мы и живем на Нартова, но ходим только в этот филиал.

Потапова Вера Михайловна

«Хотим поблагодарить Нину Александровну за ее хорошую, качественную работу. Очень ответственный, опытный,терпеливый, чуткий и отзывчивый доктор. У нас два кота мейн-куна, забот и хлопот с ними хватает, и вот уже год лечимся только у Нины Александровны. Очень бережно стерилизовала кошечку, все прививки и уколы всегда делает очень аккуратно и безболезненно. Сейчас лечим кошечке цистит и получаем полную информацию о ходе лечения, этиологии заболевания, принимаемых лекарствах. Нина Александровна действительно уделяет полноценное внимание животным. Всем рекомендуем. Опытный врач и профессионал своего дела 10 из 10!

Маша+Саша

«Выражаю благодарность вашей клинике за помощь в лечении нашего кота. Особая благодарность Филипповой Анастасии за внимание, отзывчивость и профессионализм. Отличный специалист своего дела и хороший человек.

Дарья

«Спасибо большое за работу

Василий

«Хочу выразить огромную благодарность врачам Наталье Игоревне и Роману (отчества не запомнила) за стерилизацию кошки 17.12.18 на Бекетова
При мне осмотрели кошечку и сделали наркоз, забрала ее только вечером, кошка прекрасно себя чувствовала. Думали, что будет отходить от наркоза лежа, но уже под утро кошка покушала и сама сходила в латок.
А отзывы есть про плохою чистоту и стерильность клиники — это чушь. Во многих человеческих больницах не так
ой порядок как там. Ничего прям ужасного я не заметила 🙂 Спасибо еще раз!!!

лиза

«Хочу выразить благодарность Карезиной Марии Юрьевне! А так же ассистенту данной клиники! Это специалисты высокого класса! Оказали неотложную помощь нашей кошке в короткий срок. Успокоили не только питомца, но и нас. После операции все доходчиво объяснили, жали ценные советы. Теперь по любому вопросу — только к этому доктору. Цены очень адекватные!

Алёна

«Огромное спасибо врачу клиники Расковой Елене и её помощнику Антону. Привезла своего котика в критическом состоянии. Как выяснилось у него были проблемы с сердцем. Врач сразу предупредила, что кот в пограничном состоянии и взялась за его экстренную реанимацию. От Алика, практически не отходили. Прерывались только на прием других пациентов клиники. Елена и Антон постоянно контролировали его состояние, при необходимости оказывали ему медикаментозную поддержку.
Елена и Антон решительно были настроены поставить кота на лапы.
Когда обращаешься к врачам за помощью очень важно, чтобы к тебе, твоему питомцу просто отнеслись по-человечески в тот момент, когда это необходимо больше всего. И я очень благодарна за это и за то, что мы попали именно к этим специалистам.

Юлия

Борода и усы как фактор риска / Здоровье / Независимая газета

Откуда берется стригущий лишай на нашу голову

Возбудители трихофитии могут очень долго сохраняться в шерсти больного животного.   Фото Depositphotos/PhotoXPress.ru

Стригущий лишай, по-научному трихофития, – весьма заразное кожное заболевание. Оно встречается в любом возрасте, но чаще у детей. Порой ребенку достаточно, скажем, погладить бездомную больную собаку или кошку, чтобы подхватить этот недуг. Впрочем, источником заражения может стать не только пораженное трихофитией животное, но и заболевший человек, а также его вещи.

Возбудители недуга – паразитические грибки трихофитоны. Они бывают двух видов: антропофильные и зоофильные. Трихофитоны первого вида передаются от человека к человеку, а второго – от животного к человеку. Возбудители трихофитии обладают очень высокой устойчивостью к различным факторам внешней среды. Это дает им возможность долгое время сохраняться как в шерсти больного животного, так и в предметах личной гигиены заболевшего человека, например в головном уборе, полотенце, расческе, мочалке.

Словом, если вы обнаружили, например, у домашнего животного такие признаки стригущего лишая, как участки с поредевшей или выпавшей шерстью, следует без промедления обратиться к ветеринарному врачу. Кстати, источником заражения среди животных могут быть не только больные собаки или кошки, но также мыши и крупный рогатый скот.

Зоофильные трихофитоны вызывают у человека инфильтративно-нагноительную форму трихофитии. Ее проявления – образование в волосах красных бугристых очагов в виде бляшек, возвышающихся над кожей. Центр бляшек позднее может покрываться корочками коричневого цвета. Из волосяных фолликулов (мешочков), находящихся в очагах поражения, выделяется гной светло-желтого цвета, что придает им вид медовых сот. Инфильтративно-нагноительная форма сопровождается общим недомоганием, увеличением лимфатических узлов, которые обычно болезненны при пальпации. У мужчин при этой форме недуга могут поражаться борода и усы.

Другая форма болезни, вызываемая антропофильными трихофитонами, называется поверхностной. Особенно легко она передается в школах, детских садах, поэтому часто наблюдается у детей школьного и дошкольного возраста. При этом недуге поражается главным образом волосистая часть головы. Заболевание проявляется образованием нескольких очагов поредения волос и шелушением кожи в виде мелких отрубевидных серых или белесоватых чешуек. Волосы в очагах поражения частично обламываются (как бы острижены) на расстоянии 1–3 мм от поверхности кожи. Поверхностной формой недуга в виде очагов бледно-розового цвета может быть поражена также кожа лица, шеи, туловища, конечностей. Больной при поверхностной трихофитии ощущает легкий зуд.

При несвоевременном и неправильном лечении стригущий лишай переходит в хроническую форму. Больной становится постоянным источником заражения для окружающих. Хронически протекающий стригущий лишай проявляется в виде проплешин на волосистой части головы. Волос на этих участках нет, от них остаются только черные точки на поверхности кожи. Еще один признак хронического стригущего лишая – крупные шелушащиеся пятна розоватого или синюшного цвета на коже ягодиц, бедер, ладоней. При хронической трихофитии также поражаются ногтевые пластинки пальцев: они теряют блеск, становятся мутными, ломкими, легко крошатся. Кроме того, хронический стригущий лишай нередко сопровождается зудом.

Теперь о диагностике стригущего лишая. Прежде всего необходимо дифференцировать данный недуг от других кожных заболеваний, например псориаза, себорейной экземы. С этой целью врач-дерматолог после осмотра пациента направляет его на специальное бактериологическое исследование волос и чешуек. Если диагноз подтвердится, назначается лечение, которое включает в себя противогрибковые препараты для приема внутрь, а также наружные средства в виде мазей и антисептических растворов. Пораженные ногтевые пластинки удаляются с помощью специальных пластырей или хирургическим путем. Таким образом, при проведении своевременного квалифицированного лечения трихофития излечивается.

В заключение еще раз подчеркнем, что стригущий лишай – заболевание заразное. Следует также отметить, что дети чаще всего заражаются этим недугом летом и в начале осени, когда много времени проводят на улице, где контактируют с животными. Если у ребенка диагностирован стригущий лишай, нужно провести дезинфекцию его вещей и комнаты, где он находится, и регулярно проводить в ней влажную уборку с дезинфицирующими растворами. Кроме того, необходимо ограничить контакты заболевшего с другими членами семьи, которым, кстати, самим следует обследоваться у дерматолога. Требуется также проверить у ветеринарного врача домашних животных на предмет наличия у них трихофитии. 

Вакцинация и иммунопрофилактика домашних животных

Когда организм любимого питомца атакован вирусами, он включает мощную систему защиты для борьбы с заболеванием. После успешной победы над болезнью иммунитет некоторое время сохраняется, но риск повторного заражения остается. В этом отношении домашние животные ничуть не отличаются от человека.

Одной из главных ошибок владельцев является попытка пренебречь услугами профессионалов, когда речь заходит о вакцинации. Это абсолютно неверно, нельзя вакцинировать животное самостоятельно.

Знать, как это работает — недостаточно

Вакцинация – это введение в организм препаратов, содержащих ослабленные или погибшие клетки возбудителей заболеваний. В ответ на это начинает вырабатываться иммунитет, и в результате:

  • животное окажется полностью защищено от болезни;
  • в случае заражения, заболевание будет протекать легче;
  • вероятность осложнений существенно снижается.

Но иммунопрофилактика — это в первую очередь инъекция. Хозяева не всегда представляют, как и куда уколоть питомца. Профессионалы из нашего ветеринарного центра призывают не экспериментировать над любимцем на основании знаний, полученных от знакомых или из Сети. В ветеринарном центре  «АХИЛЛ» всегда найдут подход к любому животному и сделают процедуру максимально комфортной и менее болезненной.

Стоимость


Наименование услуги

Цена

Вакцинация от бешенства

600-700 ₽

Делать профилактические прививки питомцам следует по ряду серьезных причин:

  • Некоторые вирусные заболевания собак и кошек опасны не только для них, а представляют угрозу для взрослых и детей. Иммунопрофилактика животного – это вклад в здоровье всей семьи.
  • Многие болезни могут привести к тяжелым последствиям. И дело не том, что на лечение в этом случае придется потратить значительные суммы, а в том, что вероятность летального исхода повышается в разы.
  • В зоне риска находятся даже пушистые домоседы, никогда не покидающие пределы квартиры.

От некоторых опасных болезней, например, бешенства, спасет только вакцинация. Об этом нужно помнить и обязательно записаться на прием в ветеринарную клинику.

Стоит ли рассчитывать на 100% защиту

Полной гарантии, что питомец после вакцинации ни в коем случае не заболеет, не даст ни один специалист, но повода отказываться от процедуры нет. Если препарат не сработал – это не свидетельство его бесполезности.

  • Сбой в защитной системе организма может произойти из-за некоторых сопутствующих и хронических заболеваний.
  • Заражение гельминтами или параллельный прием других лекарственных средств могут ослабить иммунитет, тогда вакцина не сработает.
  • Прорыв иммунитета случается из-за стрессов или нарушения графика прививок, разработанного ветеринаром.

Все эти нюансы значительны, и наши специалисты никогда не начнут иммунопрофилактику, если предварительно не будет собран полный анамнез, и проведен клинический осмотр. По его результатам будет составлен индивидуальный график и обработок от паразитов. В домашних условиях это не может сделать ни один владелец.

Есть ли риск для здоровья питомца?

Побочных эффектов после введения профессионалами, как правило, не бывает. Возможно, питомец покапризничает в плане приема пищи или незначительно поднимется температура. Все симптомы пройдут самостоятельно через день-другой.

Молодые особи наиболее восприимчивы к инфекциям, ведь иммунная система пока не научилась работать в полную силу. Поэтому повторных мероприятий по иммунопрофилактике не избежать.

Наверняка у заботливых владельцев возникнут дополнительные вопросы, на них с удовольствием ответят специалисты во время консультации и первой вакцинации. Приводите своих любимцев на прием, в нашем ветеринарном центре им гарантирована квалифицированная помощь и внимание. Мы любим и умеем заботиться о животных!

С целью соблюдения требований ветеринарного законодательства Российской Федерации, в том числе предупреждение возникновения и распространения особо опасных болезней животных на территории Москвы, владельцам собак и кошек необходимо обеспечить строгое соблюдение ветеринарных правил при содержании животных.

Владельцы животных обязаны принимать необходимые меры, обеспечивающие безопасность окружающих людей и животных, предоставлять их по требованию специалистов Государственных ветеринарных учреждений для осмотра, диагностических исследований, предохранительных прививок и лечебно-профилактических обработок.

Животных, принадлежащие гражданам подлежат обязательной, ежегодной вакцинации против бешенства начиная с 3-месячного возраста независимо от породы.

В соответствии со ст. 5.6 Кодекса города Москвы об административных правонарушениях (Закон г. Москвы от 21.11.2007 № 45) за уклонение от регистрации и вакцинации собак и кошек против бешенства в ветеринарных учреждениях предусмотрена административная ответственность.

В клинике Ахилл, нашими специалистами обеспечен комплексный подход к профилактике болезней животных зооантропонозов ( группа инфекционных инвазивных болезней общих для человека и животных).

Пусть ваши любимцы радуют вас долгие годы отменным здоровьем, а мы об этом позаботимся. Клиника работает для вас каждый день без праздников и выходных приходите. Всегда рады!

Инфекционные и вирусные заболевания представляют собой угрозу жизни и смерти для ваших домашних любимцев. Единственным эффективным, простым и доступным методом защиты является ежегодная вакцинация, которая выполняется с применением современных (аттеинуированных и инактивированных) вакцин. В нашей клинике представлен весь спектр необходимых препаратов, включая так же и вакцинацию экзотических животных специалистами в этой области.

Вакцинация проводится ежегодно, перед каждой вакцинацией проводится дегельментизация первую прививку следует планировать в возрасте 8-10 недель с ревакцинацией (повторным введением аналогичного вакцины + вакцинация от бешенства) через 3 недели. Выработка антител ( то есть устойчивости к вирусам и инфекциям) занимает некоторое время, в большинстве случаев данный процесс занимает от 8 до 14 дней, спустя это время можно гулять с животным на улице, перевозить его на дачу, брать его с собой в путешествия.

Самым оптимальным вариантом после приобретении нового члена семьи в дом – это посещение ветеринарного врача и разработка в месте с ним плана профилактических мероприятий в каждом конкретном случае — это обеспечит индивидуальный подход к вашему питомцу, в зависимости от его анамнеза, возраста, иммунного статуса на текущий момент и исключит ошибки в соблюдении плана дегельментизации, вакцинации и обработки от эктопаразитов.

Цены

Вакцинация от бешенства

600-700

График прививания собак

Заболевание

1-я прививка*

2-я прививка*

Ревакцинация

Бешенство

12-13 неделя

нет

В 1 год

Чумка

8-10 неделя

21-28 день

В 1 год

Парвовирусный энтерит

8-10 неделя

21-28 день

В 1 год

Парагрипп собак

8-10 неделя

21-28 день

В 1 год

Инфекционный гепатит

8-10 неделя

21-28 день

В 1 год

Лептоспироз

8-10 неделя

21-28 день

В 1 год

Трихофития

1-6 месяц

10-14 день

В 1 год

Микроспория

1-6 месяц

10-14 день

В 1 год


МАРЧЕНКО О. А.

Вет врач, интерн, специалист ультразвуковой диагностики

Окончила Ивановскую государственную сельскохозяйственную академию им. Беляева в 2009 г.

Терехов И. А.

Ветеринарный врач

Вет Академия им Скрябина , окончил в 2021 году

Старухина М. А.

Ассистент вет.врача

2018 закончила Московскую государственную академию ветеринарной медицины и биотехнологии им. Скрябин…

Смолякова . .

Врач интерн

С 1996 по 2000 МГУПБ (Московский Государственный Университет Прикладной Биотехнологии)

причины, симптомы, диагностика и лечение

Трихофития (стригущий лишай) – микозное поражение гладкой кожи, волос, ногтей грибками рода Trichophyton. Характеризуется образованием воспалительных очагов с четкими границами, шелушением. Пораженные волосы становятся хрупкими, обламываются над уровнем кожи и торчат в виде пеньков. Заболевание высоко заразно. Глубокие поражения кожи ведут к ухудшению общего состояния, образованию нарывов. Лечение проводится противомикотическими средствами, которые назначаются местно и внутрь. В запущенных случаях может остаться стойкое облысение на месте волос.

Общие сведения

Трихофития – это микотическое заболевание кожи и ее придатков, вызванное грибком из рода Trichophyton, может быть антропофильной, когда источником инфекции является человек и зоофильной – эта форма трихофитии возникает при контакте с инфицированными животными. Трихофития является высоконтагиозным грибковым заболеванием, заболеваемость во всех возрастных группах примерно одинакова, но у детей младшего и школьного возраста трихофитию диагностируют чаще.

Источники заражения и патогенез трихофитии

Источником инфекции являются больные трихофитией люди, животные и предметы обихода, обсемененные спорами гриба. Инфицирование зоофильной трихофитией происходит вследствие контактов с больными животными, особую опасность представляют бездомные животные. Риск заболеть повышается при постоянном контакте с животными – на животноводческих фермах, в ветеринарных лечебницах и при подкармливании бродячих собак и кошек.

При хронических вялотекущих формах трихофитии, что особенно часто встречается у женщин среднего возраста, инфекция поражает всех членов семьи через пользование общими расческами, подушками и предметами обихода. Такие факторы как скученность, пренебрежение правилами личной гигиены и частые контакты с незащищенной кожей повышают вероятность внутрисемейного заражения. После попадания спор гриба на кожу или волосистую часть головы, начинается их прорастание с формированием мицелия, что ведет к дальнейшему поражению как самой дермы, так и ее придатков.

Клинические проявления трихофитии

Симптоматика трихофитии зависит от формы заболевания, типа возбудителя и особенностей организма пациента, хотя поверхностная, инфильтративная и инфильтративно-нагноительная формы представляют собой последовательное развитие одного патологического процесса. И при отсутствии адекватного лечения поверхностная форма трихофитии может перейти в инфильтративно-нагноительную.

Поверхностная трихофития встречается на волосистой части головы и на гладкой коже, внешне проявляется округлыми очагами поражения, резко ограниченными от здоровой кожи. Инкубационный период около недели, после чего начинаются клинические проявления – участки кожи серовато-розового цвета небольших размеров с неровными очертаниями и незначительным шелушением. В очагах поражения большая часть волос обломана на уровне кожи или на 2-3 мм от нее, если волосы на голове темные, то можно увидеть темные точки – пеньки волос. Иногда волосы на пораженном трихофитией участке закручиваются и загибаются, в некоторых случаях волосы покрыты серовато-белым налетом, который состоит из спор грибка. Зуд и какие-либо другие субъективные ощущения отсутствуют. На периферии отмечаются пузырьки, гнойные узелки и корочки в виде бордюра. Отрубевидное шелушение наиболее интенсивное в центре очага, ближе к периферии практически не наблюдается. Если ни шелушения, ни интенсивного обламывания волос нет, но имеются характерные для трихофитии пеньки, то необходимо провести дополнительное обследование для исключения или подтверждения диагноза «Трихофития».

Хронические формы поверхностной трихофитии начинаются в детстве и ее отличие в том, что она не проходит к периоду полового созревания, хотя вызывается одним и тем же возбудителем. В патогенезе хронической трихофитии лежит недостаток витамина А в организме, эндокринные нарушения функций половых желез и других желез внутренней секреции и вегетативные нервные расстройства (вегето-сосудистая дистония), которые снижают защитные реакции организма. Очаги поражения локализуются в затылочной и височных зонах головы, имеется мелкоочаговое или диффузное шелушение. Отмечаются участки с обломанными волосами, при длительно текущей трихофитии появляются участки атрофии кожи с мелкими нежными рубчиками. Иногда едва заметные чешуйки на коже головы, цвет которой приобретает сиреневатый оттенок, практически не заметны, черные точки от обломанных волос тоже обнаруживаются только при внимательном осмотре.

Гладкая кожа, пораженная хронической трихофитией, синюшная с наличием серых тонких чешуек. Чаще всего поражается кожа в области ягодиц, внутренней поверхности бедер, предплечий и локтей, на лице и на верхней части туловища трихофития встречается реже, повсеместное распространение трихофитии по телу наблюдается в единичных случаях. Кожный рисунок ярко выражен, возможно утолщение рогового слоя кожи из-за чего на ладонях и подошвах появляются борозды в местах кожных складок, борозды со временем преобразуются в трещины. При поражениях трихофитией ладоней и подошв никогда не образуется пузырей. Пузыри, корочки и узелки для хронической трихофитии тоже не характерны.

Иногда инфекция переходит на ногти, хотя трихофития ногтей может протекать и без поражения кожи. Ногти утолщаются, становятся бугристыми, шершавыми на ощупь, на свободном крае ногтя можно заметить серовато-белые пятна и полосы. Надногтевая пластина не воспалена, зуд и неприятные ощущения отсутствуют.

Инфильтративно-нагноительные формы трихофитии вызывает зоофильный тип грибка, такие формы заболевания чаще встречаются у людей, проживающих в сельской местности. На волосистой части головы появляется выступающий над уровнем кожи инфильтрат синюшно-красного цвета в диаметре до 8 см, если инфильтратов несколько, то при слиянии они образуют обширный гнойный конгломерат причудливых форм. При этом воспаление имеет четкие границы и не распространяется на соседние участки кожи, очаг воспаления обычно круглой или овальной формы.

Поверхность инфильтрата трихофитии часто изъязвляется. Вокруг него имеется валик, состоящий из бляшек, мелких пузырьков и ссохшихся корочек. Через некоторое время вокруг каждого волоса образуется пустула, после окончательного формирования которой, волосы в очаге поражения расшатываются и начинают выпадать. Из расширенных волосяных фолликулов при нажатии или случайном надавливании выделяются капельки, а порой и струйки гноя, пораженный трихофитией участок очень болезненный при прикосновении. При инфильтративно-нагноительной форме трихофитии в процесс вовлекаются и пушковые волосы, но они в отличие от длинных волос не обламываются. Поверхность кожи головы при трихофитии схожа с медовыми сотами, а если нагноительно-инфильтративная форма трихофитии наблюдается в области бороды и усов, то пораженные участки напоминают винные ягоды. Через 7-10 дней инфильтрат начинает размягчаться.

Нагноительные формы трихофитии могут сопровождаться симптомами интоксикации: общая слабость, повышенная температура тела, увеличение и болезненность регионарных лимфоузлов, потеря аппетита. При отсутствии лечения нагноительные формы трихофитий саморазрешаются, так как развившееся нагноение губительно для мицелия грибов, но микотические клетки сохраняются на периферии и в чешуйках по краю очага поражения. В некоторых случаях нагноительные формы трихофитии осложняются абсцессами.

Диагностика трихофитии

Дерматолог ставит диагноз на основании клинических проявлений и особенностей жизнедеятельности пациента (контакт с животными, вспышка трихофитии в детском саду). При необходимости пациент с трихофитией может быть направлен к микологу. При микроскопическом исследовании соскоба на грибы обнаруживаются микотические клетки и разросшийся мицелий. Если необходимо провести дифференциальный диагноз, то проводят культуральное исследование с выявлением возбудителя. При атипичных случаях трихофитии необходимо неоднократное проведение диагностических процедур.

Лечение и профилактика трихофитии

Лечебная тактика зависит от типа трихофитии и, если есть такая возможность, то необходимо ограничиться лишь местными препаратами.

При лечении трихофитии гладкой кожи без вовлечения в процесс пушковых волос для обработки кожи целесообразно применять чередование противогрибковых мазей и йодсодержащих растворов. Так, утром пораженные участки смазывают раствором йода, а вечером делают аппликацию с мазями, содержащими тербинафин, бифоназол, нафтифин. Если же воспалительные явления со стороны кожи выражены более значительно, то при местном лечении трихофитий показаны комбинированные гормоносодержащие препараты.

Если трихофития гладкой кожи имеет большое количество очагов и в процесс вовлечены пушковые волосы, то помимо местной терапии показано курсовое лечение путем приема антигрибковых препаратов во внутрь, например, итраконазола, флуконазола и других производных триазола. Волосы в очагах поражения рекомендуется сбривать или состригать. Инфильтративно-нагноительные формы трихофитий помимо приема системного препарата и местной противогрибковой терапии, требуют и терапии нагноившегося инфильтрата, корочки размягчают салициловой мазью или раствором перманганата калия, после чего аккуратно снимают, на стадии разрешения инфильтрата показаны рассасывающие мази, такие как ихтиоловая и линимент по Вишневскому.

Профилактика трихофитии заключается в своевременном выявлении очагов заболевания с изоляцией больных и карантином контактных лиц. Систематические осмотры в детских садах позволяют выявить больных трихофитией детей и не допустить распространения инфекции. Избегание контакта с бездомными животными, осмотр домашних животных, в том числе и тех, которые не контактируют с дикими, снижают риск инфильтративно-нагноительных форм трихофитии.

Иммунопрофилактика дерматофитоза у животных

  • 1.

    Стенвиг Х. Изоляция дерматофитов от домашних животных в Норвегии. Nord Vet Med. 1985; 37: 161–9.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 2.

    Стенвиг Х. Передача дерматофитов от животных человеку. В: Берманн Б., Верстед А., редакторы. Лечение поверхностных грибковых инфекций. Осло, Норвегия: Агентство медицинских продуктов, Упсала, Швеция, и Норвежское управление по контролю за лекарственными средствами; 1996 г.п. 27–32.

    Google Scholar

  • 3.

    DeBoer DJ, Moriello KA. Дерматофитии. В: Грин К.Э., редакторы. Инфекционные болезни собак и кошек. 3-е изд. Сондерс, штат Миссури, 63146, США; 2006. 550–65.

  • 4.

    Радостиц О.М., Гей CC, Blood DC, Hinchcliff KW, ред. Дерматомикозы. В кн .: Ветеринария. Учебник болезней крупного рогатого скота, овец, свиней, коз и лошадей. У. Б. Сондерс, Филадельфия, Пенсильвания, 2007 г .; 10-е изд.1476–8.

  • 5.

    Граппель С.Ф., Бишоп К.Т., Бланк Ф. Иммунология дерматофитов и дерматофитозов. Bacteriol Rev.1974; 38: 222–50.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 6.

    Lepper AWD. Экспериментальная инфекция крупного рогатого скота Trichphyton verrucosum: предварительные клинические, иммунологические и гистологические наблюдения у первично инфицированного и повторно инокулированного крупного рогатого скота. Res Vet Sci. 1972; 13: 105–15.

    CAS Google Scholar

  • 7.

    Hussin Z, Smith JMB. Процедуры вакцинации и инфекционность дерматофитных поражений. Микопатология. 1983; 81: 71–6.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 8.

    Кальдерон Р.А. Иммунорегуляция дерматофитий. Crit Rev Microbiol. 1989. 16: 339–68.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 9.

    Woodfolk JA, Platts-Mills TAE. Иммунный ответ на дерматофиты.Res Immunol. 1998. 149: 436–45.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 10.

    Smith JMB, Griffin JFT. Стратегии разработки вакцины против стригущего лишая. J Med Vet Mycol. 1995; 33: 87–91.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 11.

    Кильштейн П., Рихтер В. Versuche zur Immunprophylaxe der Rindertrichophytie. [Иммунопрофилактика стригущего лишая крупного рогатого скота].Arch Exper Veterinärmed. 1970; 24: 1205–18. (на немецком).

    CAS Google Scholar

  • 12.

    Третьяков А.Д., Саркисов А.Х., Петрович С.В., Никифоров Л.Я. Création de Troupeaux Immuns et éradication de la Trichophytose par la вакцинация против животных. [Установление коллективного иммунитета и искоренение трихофитии путем вакцинации животных]. Бюллетень МЭБ. 1980; 92: 797–803 (на французском).

    Google Scholar

  • 13.

    Саркисов АХ. Современные методы борьбы с дерматомикозами животных. Москва: Успехи сельскохозяйственных наук; 1987. 181–97.

    Google Scholar

  • 14.

    Саркисов А.Х., Петрович С.В., Никифоров Л.И., Яблочник Л.М., Корольёва В.П. Иммунизация крупного рогатого скота против опоясывающего лишая. Ветеринария. 1971. 2: 54–6.

    PubMed Google Scholar

  • 15.

    Петрович С.В., Саркисов Ах.Специфическая профилактика стригущего лишая у лошадей (живая вакцина против T. equinum ). Ветеринария. 1981; 9: 40–2.

    Google Scholar

  • 16.

    Саркисов А.Х., Никифоров Л.И. Специфическая профилактика трихофитии пушных зверей. Ветеринария. 1981; 7: 37–8.

    Google Scholar

  • 17.

    Станкушев Х., Дупаринова М, Костов Г, Градинарский И.Сравнительные иммунологические исследования и определение эпизоотологической эффективности советской вакцины ЛТФ-130 при трихофитии. Вет Мед Науки. 1979; 16: 67–73 (на болгарском языке).

    PubMed Google Scholar

  • 18.

    Хорват З., Гаал Т. А szarvas’murha-tarlosömör elleni LTF-130 (SZU) clöcsiras vakcina Kiprobalasi eredmenyeu. [Результаты испытания вакцины LTF-130 против стригущего лишая крупного рогатого скота]. Мадьяр Аллаторвосок Лапья.1977; 32: 452–4 (на венгерском).

    Google Scholar

  • 19.

    Rotermund H, Franz H, Hausburg G. Erste Erfahrungen bei der Anwendung der sowjetischen Trichophytievakzine LTF-130. [Первые опыты применения советской вакцины LTF-130 против трихофитии]. Monatsh Veterinaermed. 1977; 32: 576–7 (на немецком языке).

    Google Scholar

  • 20.

    Крджалич П., Стойчевич С., Бресянац Д.Практические возможности за иммунопрофилаксу трихфисное правительство у индустрийского узла. [Практический опыт иммунопрофилактики против трихофитии крупного рогатого скота]. Ветер-Гласник. 1978; 32: 343–9 (на сербском).

    Google Scholar

  • 21.

    Амодт О., Наесс Б., Сандвик О. Вакцинация норвежского крупного рогатого скота против стригущего лишая. Zentralblatt Veterinarmed B 1982; 29: 451–6.

    CAS Google Scholar

  • 22.

    Otcenásek M, Stros K, Komárek J, Tomsíková A, Rasková H, Hamácek F. Zkusenosti s Vakcinaci skotu proti trichfytoze pri prevci a tlumeni dermatofytickych zoonoz. [Вакцинация крупного рогатого скота против трихофитии в профилактике дерматофитных зоонозов и борьбе с ними]. Вет Мед (Прага). 1981; 26: 193–202 (на чешском языке).

    Google Scholar

  • 23.

    DeBoer DJ, Moriello KA. Гуморальные и клеточные иммунные ответы на Microsporum canis при естественном дерматофитозе кошек.J Med Vet Mycol. 1993; 31: 121–32.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 24.

    Спаркс А.Х., Стокс С.Р., Граффид-Джонс Т.Дж. Гуморальные иммунные ответы у кошек с дерматофитиями. Am J Vet Res. 1993; 54: 1869–73.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 25.

    Pier AC, Ellis JA, Mills KW. Развитие иммунного ответа на экспериментальную инфекцию крупного рогатого скота Trichophyton verrucosum .Vet Dermatol. 1993; 3: 131–8.

    Google Scholar

  • 26.

    Woodfolk JA. Аллергия и дерматофиты. Clin Microbiol Rev.2005; 18: 30–43.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 27.

    Спаркс AH. Экспериментальная инфекция Microsporum canis у кошек: корреляция между иммунологическими и клиническими наблюдениями. J Med Vet Mycol. 1995; 33: 177–84.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 28.

    Кальдерон Р.А., Хей Р.Дж. Клеточно-опосредованный иммунитет при экспериментальном дерматофитозе мышей. II. Адаптивная передача иммунитета к дерматофитной инфекции лимфоидными клетками от доноров с острыми или хроническими инфекциями. Иммунология. 1984; 53: 465–72.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 29.

    Фонг ТАТ, Мосманн ТР. Роль IFN-γ в клонах Th2, опосредованных гиперчувствительностью замедленного типа. J Immunol. 1989; 143: 2887–93.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 30.

    Кога Т., Ишизаки Н., Мацумото Т., Хори Ю. Высвобождение интерферона-γ in vitro мононуклеарными клетками периферической крови пациентов с дерматофитией в ответ на стимуляцию трихофитином. Br J Dermatol. 1993; 128: 703–4.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 31.

    Кога Т., Ишизаки Х., Мацумото Т., Хори Ю. Снижение высвобождения интерферона-γ мононуклеарными клетками периферической крови пациентов с хроническим дерматофитозом в ответ на стимуляцию трихофитином.Acta Dermatol Venereol. 1995; 75: 81–2.

    CAS Google Scholar

  • 32.

    Lund A, Bratberg AM, Solbakk IT. Высвобождение интерферона-γ in vitro стимулированными трихофитином культурами цельных клеток крови от вакцинированных стригущим лишаем и контрольных телят, экспериментально инокулированных Trichpohyton verrucosum . Vet Dermatol. 2001; 12: 75–80.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 33.

    DeBoer DJ, Moriello KA. Иммунный ответ на Microsporum canis , индуцированный вакциной против грибковой клеточной стенки. Vet Dermatol. 1994; 5: 47–55.

    Google Scholar

  • 34.

    DeBoer DJ, Moriello KA. Исследования вакцины убитых дерматофитных клеточных стенок против инфекции Microsporum canis на кошках. Res Vet Sci. 1995; 59: 110–3.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 35.

    Elad D, Segal E. Иммуногенность у телят сырой рибосомной фракции Trichophyton verrucosum : полевые испытания. Вакцина. 1995; 13: 83–7.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 36.

    Элад Д., Сигал Э. Иммуногенность у морских свинок неочищенной рибосомной фракции из Microsporum canis . Вакцина. 1994; 12: 134–8.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 37.

    Monod M, Capoccia S, Lechenne B, Saugg C, Holdom M, Jousson O. Секретируемые протеазы патогенных грибов. Int J Med Microbiol. 2002; 292: 405–19.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 38.

    Jousson O, Lechenne B, Bontems O, Capoccia S, Mignon B, Barblan J, Quadroni M, Monod M. Размножение предкового гена, кодирующего секретируемый фунгализин, предшествовало дифференциации видов в дерматофитах Trichophyton и Microsporum .Microbiol. 2004; 150: 301–10.

    CAS Google Scholar

  • 39.

    Миньон Б. Новые исследования в области выявления факторов вирулентности Microsporum canis . [Новые исследования по характеристике факторов вирулентности в Microsporum canis ]. Bull Mem Acad R Med Belg. 2005; 160: 270–5 (на французском).

    PubMed Google Scholar

  • 40.

    Brouta F, Descamps F, Monod M, Vermout S, Losson B, Mignon B. Гуморальный и клеточный иммунный ответ на рекомбинантную кератинолитическую метаоллопротеазу (r-MEP3) Microsporum canis от экспериментально инфицированных морских свинок. Med Mycol. 2003; 41: 495–501.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 41.

    Vermout SM, Brouta FD, Descamps FF, Losson BJ, Mignon BR. Оценка иммуногенности и защитной эффективности вакцины субъединицы металлопротеазы Microsporum canis для морских свинок.FEMS. 2004; 40: 75–80.

    CAS Google Scholar

  • 42.

    Descamps FF, Brouta F, Vermout SM, Willame C, Losson BJ, Mignon BR. Рекомбинантная кератиназа 31,5 кДа и неочищенный экзоантиген из Microsporum canis не защищают морских свинок от гомологичной экспериментальной инфекции. Vet Dermatol. 2003. 14: 305–12.

    PubMed Google Scholar

  • 43.

    Woodfolk JA, Sung SSJ, Benjamin DC, Lee AJK, Platts-Mills TAE.Определенные репертуары Т-клеток человека опосредуют гиперчувствительность немедленного и замедленного типа к антигену Trichophyton Tri r 2. J Immunol. 2000; 165: 4379–87.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 44.

    Раска М., Рыбникар А., Чумела Дж., Белакова Дж., Вейгл Е. Рекомбинантные белковые и ДНК-вакцины, полученные из hsp60 Trichophyton mentagrophytes , контролируют клиническое течение трихофитоза у крупного рогатого скота и морских свинок.Микозы. 2004; 47: 407–17.

    Google Scholar

  • 45.

    Intervet, Краткое изложение характеристик продукта Bovilis® Ringvac на http://www.vmd.gov.uk/espcsite/Documents/124263.DOC (получено 9 мая 2007 г.).

  • 46.

    Bioveta Inc., Обзор характеристик продукта для Trichoben на http://www.bioveta.cz/product.asp?vyrobekid=102, и Trichoben AV на http://www.bioveta.cz/product .asp? vyrobekid = 11 (получено 9 мая 2007 г.).

  • 47.

    Boehringer Ingelheim Vetmedica GmbH, Обзор характеристик продукта Insol® Trichophyton на http://www.imb.ie/view_spc.asp?pa_number=10007%2F034%2F001 (получено 9 мая 2007 г.).

  • 48.

    Рыбникарж А. Перекрестный иммунитет телят после вакцинации против трихофитии. Acta Vet Brno. 1992; 61: 189–94.

    Google Scholar

  • 49.

    Pier AC, Hodges AB, Lauze JM, Raisbeck M. Экспериментальный иммунитет к Microsporum canis и перекрестные реакции с другими дерматофитами, имеющими ветеринарное значение.J Med Vet Mycol. 1995; 33: 93–7.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 50.

    Вавжкевич К., Вавжкевич Дж. Ранняя иммунизация телят инактивированной вакциной против трихофитии. Polskie Archivum Weterynaryjne. 1988; 28: 5–16.

    Google Scholar

  • 51.

    Wawrzkiewicz K, Wawrzkiewicz J. Инактивированная вакцина против стригущего лишая. Comp Immunol Microbiol Infect Dis.1992; 15: 31–40.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 52.

    Bratberg AM, Solbakk IT, Gyllensvaan C, Bredahl LK, Lund A. Experimentelle Challenge-Studie zur Wirksamkeit einer inaktivierten und einer weak Rindertrichophytie-Vakzine. [Эффективность инактивированной и живой вакцины против стригущего лишая крупного рогатого скота в экспериментальном испытании с заражением]. Tierärztliche Umschau. 1999; 54: 519–20 (на немецком языке).

    Google Scholar

  • 53.

    Коцик Т. Оценка иммуногенных свойств живых и убитых вакцин против трихофитии морских свинок и телят. Pol Arch Weter. 1982; 23: 95–107 (на польском языке).

    PubMed CAS Google Scholar

  • 54.

    Хайдуч М., Драбек Дж., Рацлавский В., Котала В., Михалек Т., Зеленкова И. Разнообразие между диким типом и прививочными штаммами Trichophyton verrucosum исследовано с помощью случайного амплифицированного полиморфного анализа ДНК.Folia Biologica (Прага). 1999; 45: 151–6.

    CAS Google Scholar

  • 55.

    Рыбникарж А., Чумела Дж., Врзал В. Тестирование защитных эффектов авирулентной вакцины против трихофитии крупного рогатого скота. Вет Мед (Прага). 1986; 31: 219–26 (на чешском языке).

    Google Scholar

  • 56.

    Рыбникарж А., Чумела Дж., Врзал В., Крупка В. Иммунитет крупного рогатого скота, вакцинированного против стригущего лишая. Микозы.1991; 34: 433–6.

    PubMed Статья Google Scholar

  • 57.

    Гуддинг Р., Несс Б. Вакцинация крупного рогатого скота против стригущего лишая, вызванного Trichophyton verrucosum . Am J Vet Res. 1986; 47: 2415–7.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 58.

    Kielstein P, Wolf H, Graser Y, Buzina W., Blanz P. Zur Variabilität von Trichophyton verrucosum-Isolaten aus Impfbeständen mit Rindertrichophytie.[Об изменчивости изолятов Trichophyton verrucosum из вакцинированных стад стригущим лишаем крупного рогатого скота]. Микозы. 1998. 41 (Дополнение 2): 58–64 (на немецком языке).

    PubMed Google Scholar

  • 59.

    Гуддинг Р., Нэсс Б., Амодт О. Иммунизация против стригущего лишая крупного рогатого скота. Vet Rec. 1991; 128: 84–5.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 60.

    Гордон П.Дж., Бонд Р.Эффективность живой аттенуированной вакцины Trichophyton verrucosum для борьбы с дерматофитозом крупного рогатого скота. Vet Rec. 1996. 139: 395–6.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 61.

    Рыбникарж А., Врзал В., Чумела Дж. Защитная эффективность вакцин против дерматофитоза крупного рогатого скота после двойной и однократной вакцинации. Микозы. 1997. 41: 83–6.

    Google Scholar

  • 62.

    Rybnikář A, Vrzal V, Chumela J. Минимальная эффективная доза вакцины против трихофитии телок. Вет Мед (Прага). 1991; 36: 593–7 (на чешском языке).

    Google Scholar

  • 63.

    Törnquist M, Bendixen PH, Pehrson B. Вакцинация против стригущего лишая телят при специализированном производстве говядины. Acta Vet Scand. 1985; 26: 21–9.

    PubMed Google Scholar

  • 64.

    Наесс Б., Сандвик О.Ранняя вакцинация телят против стригущего лишая, вызванного Trichophyton verrucosum . Vet Rec. 1981; 109: 199–200.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 65.

    Рыбникарж А., Врзал В., Чумела Й. Вакцинация молодых телят против трихфитоза. Acta Vet Brno. 1993; 62: 55–61.

    Google Scholar

  • 66.

    Bratberg AM, Solbakk IT, Lund A, Bredahl LK. Sicherheit und Wirksamkeit des Impfstoffes Permavax® – Tricho / N gegen bovine Trichophytie bei neugeborenen Kälbern.[Безопасность и эффективность вакцины Premavax ® -Tricho / N против трихофитии у новорожденных телят]. Tierärztliche Umschau. 1998; 53: 686 (на немецком языке).

    Google Scholar

  • 67.

    Рыбникарж А., Чумела Дж., Врзал В. Иммунизация стельных коров против стригущего лишая и ее влияние на потомство. Acta Vet Brno. 2001; 70: 421–3.

    Google Scholar

  • 68.

    Gudding R, Lund A.Иммунопрофилактика дерматофитии крупного рогатого скота. Кэн Вет Дж. 1995; 36: 302–6.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 69.

    Siesenop U, Böhm KH, Brandenbusemeyer E, Conrad P. Исследования роста, спорообразующей способности и вирулентности вакцинного штамма TV-M-310 вакцины Bioveta против стригущего лишая. Микозы. 1994; 37: 371–6.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 70.

    Lund A, Bratberg AM, Evensen Ø. Рекрутирование клеток в коже в ходе экспериментальной инфекции Trichophyton verrucosum у вакцинированного и невакцинированного теленка. В: Kwochka KW, Willemse T, Tscharner Cv. Успехи ветеринарной дерматологии. Баттерворт-Хайнеманн; 1998; 3: 271–81.

  • 71.

    Панин А.Н., Маноян М.Г., Летягин К.П., Саркисов К.А. Профилактика и терапия трихофитии животных вакциной «ВЕРМЕТ» [аннотация]. Vet Dermatol. 2000; 11 (Дополнение 1): 40.

    Google Scholar

  • 72.

    Саркисов Ах. Специальная профилактика трихофитоза крупного рогатого скота. [Специфическая профилактика трихофитии молодняка КРС]. Бюллетень МЭБ. 1976; 85: 481–8 (на французском).

    Google Scholar

  • 73.

    Кильштейн П. Систематическая борьба с глубоким дерматофитозом крупного рогатого скота в бывшей ГДР. Микозы. 1990; 33: 575–9.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 74.

    Rybnikář A, Vrzal V, Chumela J, Hejtmánek M, Weigl E. Вакцинация крупного рогатого скота против трихофитии с использованием чешских вакцин. J Mycol Méd. 1996; 6: 93–4.

    Google Scholar

  • 75.

    Spanoghe L, Kuiper JD, Brethouwer AH. Een onderzoek naar de werkzaamheid van het trichofytie-Vacin LTF 130 onder praktykomstandigheden. [Исследование эффективности вакцины против трихофитии LTF 130 в практических условиях]. Tijdschri Diergeneeskd.1985; 110: 1011–4 (на голландском).

    CAS Google Scholar

  • 76.

    Gyllensvaan C, Plym Forshell K, Törnquist M. Projekt Felfri hud — en lägesrapport. [Схема безошибочного скрытия — отчет о состоянии]. Sv Vet Tidn. 1992; 44: 423–4 (на шведском языке).

    Google Scholar

  • 77.

    Mackenzie DWR, Loeffler W, Mantovani A, Fujikura T. Рекомендации по диагностике, профилактике и борьбе с дерматофитозами у человека и животных.Женева: Всемирная организация здравоохранения; 1986.

    Google Scholar

  • 78.

    Рыбникарж А., Врзал В., Чумела Дж. Вакцинация собак и телят против Microsporum canis . Acta Vet Brno. 1996; 65: 161–4.

    Google Scholar

  • 79.

    Pier AC, Zancanella PJ. Иммунизация лошадей против дерматофитии, вызванной Trichophyton equinum . Конная практика.1993; 15: 23–7.

    Google Scholar

  • 80.

    Wawrzkiewicz K, Ziolkowska G. Специфическая иммунопрофилактика при инфекции Microsporum canis у морских свинок. J Mycol Méd. 1996; 6: 56–62.

    Google Scholar

  • 81.

    DeBoer DJ, Moriello KA, Blum JL, Volk LM, Bredahl LK. Безопасность и иммунологические эффекты после инокуляции кошек инактивированной и комбинированной живо-инактивированной дерматофитической вакциной.Am J Vet Res. 2002; 63: 1532–7.

    PubMed Google Scholar

  • 82.

    Рыбникарж А., Врзал В., Чумела Дж., Петрас Дж. Иммунизация кошек против Microsporum canis . Acta Vet Brno. 1997; 66: 177–81.

    Google Scholar

  • 83.

    Bioveta Inc., Обзор характеристик продукта для Biofel M Plus на http://www.bioveta.cz/product.asp?vyrobekid=114, Biocan M Plus на http: // www.bioveta.cz/product.asp?vyrobekid=142 и Trichoequen на http://www.bioveta.cz/product.asp?vyrobekid=103 (последнее посещение — 30 июня 2007 г.).

  • 84.

    Рыбникарж А., Чумела Дж., Врзал В., Лысак Дж., Петрас Дж. Вакцинация лошадей против трихофитии. Acta Vet Brno. 1991; 60: 165–9.

    Артикул Google Scholar

  • 85.

    Boehringer Ingelheim Vetmedica GmbH, Обзор характеристик продукта Insol ® Dermatophyton по адресу http: // www.boehringer-ingelheim.com/corporate/products/animal_health_horse_02.htm (получено 17 апреля 2007 г.).

  • 86.

    Karle J, Steller U, Fenner A. Kontrollierte Blindstudie zur Prüfung der Wirksamkeit des inaktivierten Impfstoffes Insol ® Dermatophyton bei künstlich infizierten Pferden. [Контролируемое слепое исследование для доказательства эффективности инактивированной вакцины Insol ® Dermatophyton у искусственно инфицированных лошадей]. Pferdeheilkunde. 2002; 18: 625–8 (на немецком языке).

    Google Scholar

  • 87.

    Fenner A, Karle J. Therapeutische Impfung gegen Dermatophytosen beim Pferd mit Insol® Dermatophyton. [Терапевтическая вакцинация против дерматофитии лошадей с помощью Insol® Dermatophyton]. Praktischer Tierarzt. 81: 7, 574–8 (на немецком языке).

  • 88.

    Descamps F, Brouta F, Losson B., Mignon B. Перспективы вакцинации anti-dermatophytique chez les carnivores homestiques [Перспективы антидерматофитной вакцинации домашних плотоядных животных]. Ann Med Vet. 2001; 145: 178–82 (на французском).

    Google Scholar

  • 89.

    Ветеринарный компендиум Швейцарии, Insol® Dermatophyton, на http://www-vetpharm.uzh.ch/TAK/00000000/00001500.VAK (получено 20 апреля 2007 г.).

  • 90.

    DeBoer DJ, Carlotti DN. Отчет о семинаре по противогрибковой терапии. В: Хиллер А., Фостер А.П., Квочка К., редакторы. Достижения ветеринарной дерматологии, том 5. Oxford: Blackwell; 2005. с. 306–11.

    Google Scholar

  • 91.

    Hagen KW, Горхэм-младший. Дерматомикозы у пушных зверей: шиншиллы, хорька, норки и кролика. Vet Med Small Anim Clin. 1972; 67: 43–8.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 92.

    Бем К.Х., Лолигер К. Die Verbreitung von Dermatophyten bei Pelztieren (Nerz und Chinchilla). [Распространение дерматофитов у пушных зверей (норка и шиншилла)]. Zentralbl Veterinarmed B. 1969; 16: 775–83 (на немецком языке).

    PubMed Google Scholar

  • 93.

    Яновиц Е.Б., Лонг Г.Г. Дерматомикоз ранчо-лисиц. J Am Vet Med Assoc. 1984; 185: 1393–4.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 94.

    Торрес-Родригес Дж. М., Дронда М. А., Розелл Дж., Мадренис Н. Заболеваемость дерматофитозом на кроличьих фермах в Каталонии, Испания, и его последствия для здоровья человека. Eur J Epidemiol. 1992; 8: 326–9.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 95.

    Саркисов АХ, Никифоров Л.И. Специфическая профилактика инфекции Trichophyton у дежурных животных (чернобурка и песец). Бык ВИЕВ. 1981; 42: 32–4.

    Google Scholar

  • 96.

    Bioveta Inc., Краткое изложение характеристик продукта Trichopelen на http://www.bioveta.cz/product.asp?vyrobekid=43 (получено 25 июня 2007 г.).

  • 97.

    Никифоров Л.И., Чучина Г.В. Динамика видов дерматофитов среди кормовых животных и кроликов.Ветеринария. 1989; 1: 38.

    Google Scholar

  • 98.

    Englund L, Mattson R, Berndtson LT. Возможный эффект вакцинации против инфекции Trichophyton mentagrophytes на шведской лисьей ферме. Acta Vet Scand. 1990; 31: 121–3.

    Google Scholar

  • 99.

    Рыбникарж А., Чумела Й., Врзал В., Непержены Й. Вакцинация кроликов против трихофитии — экспериментальное исследование.Acta Vet Brno. 1998. 67: 121–5.

    Google Scholar

  • 100.

    Rybnikář A, Chumela J, Vrzal V. Стригущий лишай у пушных зверей. Veterinářstvi. 1993; 43: 390–1 (на чешском языке).

    Google Scholar

  • 101.

    Рыбникарж А., Врзал В., Чумела Ю., Коварж С. Стригущий лишай в большой колонии кроликов. Veterinářstvi. 1995; 45: 120–1 (на чешском языке).

    Google Scholar

  • 102.

    Костро К. Иммуногенность Trichophyton mentagrophytes , выделенных от песцов с стригущим лишаем. Pol J Vet Sci. 2004; 7: 15–20.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 103.

    Бредаль Л.К., Братберг А.М., Солбакк ИТ, Лунд А. Эффективность экспериментальной вакцины Microsporum canis на выращиваемых лисицах. Vet Dermatol. 2000; 11 (приложение 1): 39 (Научные тезисы, 4-й Всемирный конгресс ветеринарной дерматологии, Сан-Франциско).

    Google Scholar

  • 104.

    Бредаль Л.К., Братберг А.М., Солбакк ИТ, Лунд А. Безопасность экспериментальной вакцины Microsporum canis для выращиваемых лисиц. Vet Dermatol. 2000; 11 (приложение 1): 45 (Научные тезисы, 4-й Всемирный конгресс ветеринарной дерматологии, Сан-Франциско).

    Google Scholar

  • 105.

    Simaljakova M, Buchvald J, Olexova B. Microsporum canis -Infektion beim Kaninchen mit Ubertragung auf den Menschen.[ Инфекция Microsporum canis у кроликов и ее передача человеку]. Микозы. 1989; 32: 93–6 (на немецком языке).

    PubMed CAS Google Scholar

  • 106.

    Wabacha JK, Gitau GK, Bebora LC, Bwanga CO, Wamuri ZM, Mbithi PMF. Возникновение дерматомикоза (стригущего лишая), вызванного Trichophyton verrucosum , у молочных телят и его распространение среди обслуживающего персонала. J S Afr Vet Ass. 1998; 69: 172–3.

    CAS Google Scholar

  • 107.

    Ming PX, Xia YL, Bulmer GS. Вспышка Trichophyton verrucosum в Китае, переданная от коров человеку. Микопатология. 2006. 161: 225–8.

    PubMed Google Scholar

  • 108.

    Лундер М., Лундер Б. Может ли инфекция Microsporum canis стать серьезной дерматологической проблемой? Дерматология. 1992; 184: 87–9.

    PubMed CAS Статья Google Scholar

  • 109.

    Али Р., Бергер Т. Распространенные поверхностные грибковые инфекции у больных СПИДом. Clin Infect Dis. 1996; 22 (Приложение 2): S128–32.

    PubMed Google Scholar

  • 110.

    Bournerias I, De Chauvin MF, Datry A, Chambrette I, Carriere J, Devidas A, Blanc F. Необычные инфекции Microsporum canis у взрослых пациентов с ВИЧ. J Am Acad Dermatol. 1996; 35: 808–10.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 111.

    Porro AM, Yoshioka MC, Kaminski SK, Palmeira Mdo C, Fischman O, Alchorne MM. Диссеминированный дерматофитоз, вызванный Microsporum gypseum , у двух пациентов с синдромом приобретенного иммунодефицита. Микопатология. 1997; 137: 9–12.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 112.

    Сандвен П. Эпидемиология дерматофитных инфекций. В: Берманн Б., Верстед А., редакторы. Лечение поверхностных грибковых инфекций. Норвегия, Упсала и Осло: Агентство медицинских продуктов, Швеция и Норвежское управление по контролю за лекарственными средствами; 1996 г.п. 27–32.

    Google Scholar

  • 113.

    Seebacher C. Epidemiologie, Klinik und Therapie von Dermatomykosen durch zoophile Dermatophyten. [Эпидемиология, клиника и лечение дерматомикозов, вызванных зоофильными дерматофитами]. Микозы. 2000; 43 (Дополнение 1): 4–7 (на немецком языке).

    PubMed Google Scholar

  • 114.

    Мориелло К.А. Обзор зоонозных кожных заболеваний собак и кошек.Animal Res Rev.2004; 4: 157–68.

    Google Scholar

  • 115.

    Bildfell RJ, Hedstrom OR, Dearing PL. Вспышка дерматофитии у выращиваемых норок в США. Vet Rec. 2004. 155: 746–8.

    PubMed CAS Google Scholar

  • 116.

    Haab C, Bertschinger HU, Rotz Av. Epidemiologie der Trichophytie beim Mastkalb im Hinblick auf die Verhütung von Lederschäden. [Эпидемиология стригущего лишая телят с точки зрения профилактики дефектов кожи].Schweizer Archiv für Tierheilkunde. 1994; 136: 217–26 (на немецком языке).

    PubMed CAS Google Scholar

  • 117.

    Coles GC. Как улучшить качество шкуры и шкуры. J Soc Leather Technol Chem. 1996; 80: 39-40.

    Google Scholar

  • 118.

    Аноним. Новая вакцина против стригущего лишая. Кожа 1993; 195: 16.

  • 119.

    Bredahl L, Carlsson J, Gyllensvaan C. Ringorm hos nötkreatur – klinik, bekämpande och betydelse.Стригущий лишай крупного рогатого скота — клиника, контроль и значение. Sv Vet Tidn. 1998; 50: 413–8 (на шведском языке).

    Google Scholar

  • 120.

    Гуддинг Р. Анализ затрат и результатов вакцинации против стригущего лишая крупного рогатого скота. Acta Vet Scand. 1996; 90 (Прил. 1): 67–8.

    CAS Google Scholar

  • Патент США на вакцину против стригущего лишая (Патент № 6,132,733 выдан 17 октября 2000 г.)

    ОБЛАСТЬ ИЗОБРЕТЕНИЯ

    Настоящее изобретение относится к вакцине, содержащей антигены паразитарных организмов, вызывающих стригущий лишай, к способам производства такой вакцины и к способам лечения пациентов такой вакциной.

    Уровень техники

    Люди и другие млекопитающие, включая многие виды домашних животных от молочного скота до семейных кошек, страдают от стригущего лишая (дерматомикоза), который вызывается инфекцией одним или несколькими паразитарными грибами, обычно называемыми «дерматофитами» ( то есть организмы, которые при заражении вызывают стригущий лишай). Дерматофиты включают без ограничения виды, перечисленные в таблице I.

     ТАБЛИЦА I
    
         ______________________________________
    
         Дерматофиты и хозяева
    
         Дерматофиты-хозяева
    
         ______________________________________
    
         Эпидермофитон хлопьевидный
    
                           человек
    
         Microsporum audouini
    
                           человек (дети), собаки, обезьяны
    
         Microsporum canis собаки, кошки, человек, овцы, обезьяны,
    
                           свинья
    
         Искаженный микроспорум
    
                           обезьяны, собаки
    
         Microsporum equinum
    
                           лошади
    
         Microsporum gypseum.(гипс)
    
                           человек, собаки, кошки, лошади
    
         Microsporum nanum свиней
    
         Концентрический трихофитон
    
                           человек
    
         Trichophyton equinum
    
                           мужчина (дети), лошади
    
         Trichophyton gallinae
    
                           птица, человек
    
         Гипс Trichophyton (гипс)
    
                           овца
    
         Trichophyton megnini
    
                           человек, крупный рогатый скот
    
         Trichophyton mentagrophytes
    
                           мыши, крысы, ондатры, шиншиллы,
    
                           крупный рогатый скот, человек, лошади, овцы, собаки,
    
                           кошки, свиньи, козы, кролики, цесарки
    
                           свиньи
    
         Trichophyton quinckeanum
    
                           человек, лошади, овца
    
         (квинкеанум)
    
         Trichophyton rubrum
    
                           собаки, свиньи, лисы, приматы, мыши,
    
                           белки, ондатры
    
         Trichophyton schoenleini
    
                           человек, кошки, мыши, крысы, кролики
    
         Trichophyton tonnsurans
    
                           человек
    
         Trichophyton verrucosum
    
                           крупный рогатый скот, человек, лошади, собаки, овцы
    
         Trichophyton verrucosum var.альбом
    
                           крупный рогатый скот
    
         Trichophyton verrucosum var.
    
                           крупный рогатый скот, свиньи
    
         дискоиды
    
         Trichophyton verrucosum var.
    
                           овца
    
         охрацеум
    
         Trichophyton violaceum
    
                           человек
    
         ______________________________________
    
     

    Обширную дополнительную информацию, относящуюся к дерматофитам и дерматофитной микологии, можно найти в «Справочнике по медицинской микологии» Кэмпбелла и Стюарта (John Wiley & Sons, 1980) (далее «Справочник Кэмпбелла / Стюарта»), который включен здесь в качестве ссылки как если изложено полностью.

    Стригущий лишай обычно проявляется как серия быстро расширяющихся раздражающих поражений, которые могут возникать на любом участке кожи. Дерматофиты поражают в основном ороговевшие ткани, особенно роговой слой и волокна волос, что приводит к автолизу структуры волокон, отламыванию волос и облысению. Экссудация из пораженных эпителиальных слоев, эпителиальных остатков и гиф грибов приводит к образованию сухих корок, характерных для этого заболевания. Поражения прогрессируют, если существуют подходящие условия окружающей среды для роста мицелия, включая теплую влажную атмосферу и слегка щелочной pH кожи.Все дерматофиты — это строгие аэробы, и грибы вымирают под коркой в ​​центре большинства поражений, оставляя активной только периферию. Именно этот способ роста вызывает центробежную прогрессию и характерную кольцевую форму поражений (отсюда «стригущий лишай»). Вторичная бактериальная инвазия в волосяные фолликулы и другие ткани также часто связана с инфекцией стригущего лишая.

    Многие распространенные недуги на самом деле являются дерматофитными инфекциями. Tinea pedis (микоз стопы или стригущий лишай стоп) связан с Epidermophyton floccusum, различными видами Trichophyton и, реже, с видами Microsporum и другими грибами.Tinea unguium (стригущий лишай ногтей) вызывается Trichophyton rubrum. Tinea cruris («качок зуд» стригущего лишая в паховой области) возникает в результате заражения Epidermophyton floccusum и разновидностями Trichophyton. Tinea corporis (стригущий лишай тела) вызывается различными видами Trichophyton и Microsporum, поражает гладкую и безволосую кожу и приводит либо к простому шелушению, либо к глубоким гранулемам. Tinea imbricata (чешуйчатый стригущий лишай) — это тропическое заболевание, которое, по-видимому, вызывается одним грибом, Trichophyton contricum.Tinea barbae (зуд парикмахера или стригущий лишай бороды) вызывается различными видами Trichophyton и Microsporum. Опоясывающий лишай на голове (стригущий лишай кожи головы и волос) чаще всего встречается у детей, но может поражать и взрослых. Возбудители различных видов Trichophyton и Microsporum могут передаваться через контакт с инфицированными животными или детьми. Чаще всего поражается Microsporum audouini, но Microsporum canis и Microsporum gypsum (gypseum) вызывают более глубокие и тяжелые поражения. Также известно, что Trichophytontonsurans вызывает широко распространенные инфекции кожи головы.

    На сегодняшний день проблема стригущего лишая, по большей части решается постинфекционным лечением, поскольку эффективная вакцина недоступна. Роль pH кожи в развитии стригущего лишая широко известна. Восприимчивость людей к стригущему лишаю намного выше до полового созревания, чем после, когда pH кожи падает с примерно 6,5 до примерно 4,0. Это изменение в значительной степени связано с выведением жирных кислот с кожным салом, и эти жирные кислоты часто обладают сильным фунгистатическим действием. По этой причине для уничтожения инфекционного грибка и облегчения состояния использовались различные виды средств местного применения.Многие методы лечения стригущего лишая основаны на изменении pH кожи путем местного применения различных агентов (например, пропионовой кислоты, ундециленовой кислоты). Другие методы лечения стригущего лишая основаны на других коммерчески доступных продуктах местного применения, таких как Conofite и Captan. Также доступны пероральные агенты (например, гризеофульвин и кетоконазол).

    К сожалению, во многих случаях постинфекционное лечение не может полностью предотвратить. После прекращения терапии обычно происходит повторное инфицирование.Следовательно, было бы желательно разработать вакцину от стригущего лишая, чтобы предотвратить инфекцию, прежде чем возникнут эти неблагоприятные эффекты. Одна из целей настоящего изобретения — предоставить такую ​​вакцину.

    СУЩНОСТЬ ИЗОБРЕТЕНИЯ

    В соответствии с настоящим изобретением раскрыта вакцина против стригущего лишая, содержащая антиген по меньшей мере из одного дерматофита и подходящий носитель. «Антиген» может включать один антиген дерматофита или множество антигенов при условии, что включен по крайней мере один антиген, который будет вызывать достаточный иммунный ответ для придания устойчивости реципиенту вакцины к инфекции стригущего лишая.Антиген также может происходить от более чем одного дерматофита. Если получают препарат из более чем одного дерматофита, антиген может включать антигены, общие для всех используемых видов дерматофитов, и / или антигены, специфичные только для определенных видов. Антиген может быть «от дерматофита» в том смысле, что он имеет по крайней мере один эпитоп, который иммунологически идентичен или перекрестно реагирует с эпитопом, который обнаружен в структуре дерматофита или в структуре веществ, продуцируемых дерматофитом во время инфекции. (е.g .. токсины, которые производятся и / или выделяются организмом во время инфекции).

    Подходящие носители для введения вакцин хорошо известны в данной области и могут включать буферы, гели, микрочастицы, имплантируемые твердые вещества, растворители, другие адъюванты или любые другие средства, с помощью которых антиген вакцины может быть введен пациенту и произведен в достаточной степени. доступны для создания иммунного ответа на антиген. В предпочтительных вариантах осуществления настоящего изобретения носитель представляет собой содержащий лактозу раствор лактатного раствора Рингера (или другой изотонический раствор), гель гидроксида алюминия и формальдегид.Формальдегид добавляют к предпочтительным вариантам осуществления, чтобы служить средством, которое убивает дерматофиты и предотвращает заражение неспецифическими грибами или бактериями. Другие такие агенты также можно использовать при составлении препаратов антигенов и вакцин по настоящему изобретению. Также раскрыт способ получения такой вакцины против стригущего лишая. Способ включает приготовление препарата антигена, содержащего описанный выше дерматофитный антиген, и объединение препарата антигена с подходящим носителем.Препарат антигена можно получить любыми доступными способами для получения антигена в форме, которая может быть добавлена ​​к носителю. Антиген может быть выделен для использования в таких препаратах любыми доступными способами, включая, помимо прочего, гомогенизацию дерматофитов или частей дерматофитов, фракционирование препаратов дерматофитов, производство дерматофитного антигена с помощью технологии рекомбинантной ДНК, выделение выделений дерматофитов и культивирование материала из очагов стригущего лишая. . В предпочтительных вариантах осуществления настоящего изобретения препарат антигена получают из гомогенизированных культур соответствующих дерматофитов.Предпочтительно, чтобы все дерматофиты в культуре были уничтожены до гомогенизации культуры (например, путем добавления формальдегида или другого агента, убивающего дерматофиты). В предпочтительных вариантах осуществления также аспирируют или фильтруют гомогенизированную культуру перед ее добавлением к носителю. Наконец, препарат антигена добавляют к носителю таким образом, чтобы антиген присутствовал в концентрации, достаточной для того, чтобы вызвать иммунный ответ и / или придать устойчивость при введении вакцины пациенту.

    Также раскрыты способы лечения пациента с использованием вакцины по настоящему изобретению и вакцин, полученных в соответствии со способом по настоящему изобретению. Лечение может быть с целью выработки иммунитета к инфекции стригущего лишая (например, профилактическое лечение) или с целью облучения существующей инфекции. Такой пациент может быть млекопитающим любого вида, восприимчивым к инфекции дерматофитами. Также раскрыты способы лечения беременной пациентки такими вакцинами, чтобы потомство беременности проявляло устойчивость к инфекции стригущего лишая при рождении.

    ОПИСАНИЕ ПРЕДПОЧТИТЕЛЬНЫХ ВАРИАНТОВ ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ

    Образцы различных дерматофитов доступны у коммерческих поставщиков (например, Difco, Gibco Cultures of Microsporum canis, Microsporum gypsum и Trichophyton mentagrophytes также были депонированы заявителями в ATCC в соответствии с Будапештским соглашением под номерами доступа ATCC 20970, ATCC 20971 и ATCC. 20972. Способы выделения различных дерматофитов также хорошо известны в данной области техники и могут быть найдены в Campbell / Stewart Handbook.

    Следующие ниже примеры иллюстрируют настоящее изобретение в некоторых предпочтительных вариантах осуществления. Однако объем настоящего изобретения не ограничивается этими примерами и определяется условиями прилагаемой формулы изобретения.

    ПРИМЕР 1

    Чашки с декстрозным бульоном Сабуро («SDB») и декстрозой Сабуро («SD») были получены от Difco, Gibco и DiMed (Сент-Пол, Миннесота). SDB — это бульон, содержащий неопептон и бакто-декстрозу в соотношении 1: 4.SD агар содержит неопептон, бакто-декстрозу и агар в соотношении 2: 8: 3. Агар SDB и SD для планшетов также можно приготовить в соответствии с рецептами, приведенными на страницах 384-85 Руководства Кэмпбелла / Стюарта.

    Отдельные образцы Microsporum canis, Microsporum gypsum и Altemaria sp. (грибок, не вызывающий стригущий лишай) были изолированы от человека (который был инфицирован инфицированной кошкой), крупного и крупного рогатого скота, соответственно. следующим образом: поражение стригущего лишая, содержащее желаемый грибок, промывали 70% спиртовым раствором и давали ему высохнуть на воздухе.Затем поверхность поражения соскребали скальпелем, чтобы удалить часть инфицированной ткани. Затем соскобы помещали в SDB и культивировали. После того, как наблюдался значительный рост, образец каждой культуры помещали на чашки SD для проверки чистоты культуры. Затем чистые культуры использовали в качестве инокулята, как описано ниже.

    Microsporum canis, Microsporum gypsum и Alternaria sp. каждый использовался для инокуляции отдельного флакона объемом 10 мл, содержащего SDB. Затем три флакона инкубировали при комнатной температуре в течение 4 дней.Каждый флакон энергично встряхивали один раз в течение каждого дня культивирования.

    Затем содержимое каждого флакона добавляли в отдельную обычную камеру для выращивания на 400 мл (коммерчески доступную от Corning), содержащую 90 мл SDB. Затем камеры выращивали при комнатной температуре до достижения максимального роста (т.е. отсутствия увеличения по сравнению с предыдущим днем, измеренного на глаз). Камеры энергично встряхивали один раз в течение каждого дня культивирования. При максимальном росте был. Достигнув этого, образец из каждой камеры помещали на планшеты SD для проверки чистоты культур.Максимальный рост Microsporum canis, Microsporum gypsum и Alternaria sp. оказалось, что это примерно 4 дня, 7 дней и 4 дня соответственно.

    После того, как культуры были определены как чистые, в каждую камеру добавляли формальдегид, разбавленный лактатным раствором Рингера, так, чтобы конечная концентрация формальдегида в каждой камере составляла 0,2% в общем объеме 400 мл. Затем культурам давали отстояться на 4 дня. Культуры высевали на чашки SD, чтобы увидеть, все ли грибы погибли.

    После уничтожения всех грибов культуры Microsporum canis, Microsporum gypsum и Alternaria sp. были отдельно гомогенизированы с использованием блендера Oster в течение 2-5 минут при низкой температуре, следя за тем, чтобы блендер не перегревал и не нагревал гомогенизированные культуры. Затем гомогенизированным культурам давали постоять приблизительно 48 часов.

    Каждую гомогенизированную культуру затем отсасывали через фильтр Whatman 4. Затем были объединены аспираты от всех трех организмов.72 мл геля гидроксида алюминия / метилцеллюлозы (коммерчески доступного от Barre) или его эквивалента добавляли в качестве стандартного адъюванта, и смесь доводили до конечного объема 3600 мл с помощью раствора Рингера с лактатом для получения конечной вакцины.

    5 мл последней вакцины вводили крупному рогатому скоту на нескольких фермах. В зависимости от фермы, 50-100% обработанного крупного рогатого скота были излечены от ранее существовавшей инфекции стригущего лишая и проявляли устойчивость к повторной инфекции после лечения. Те инфекции, которые не поддаются лечению вакциной, вероятно, были вызваны инфекционными организмами, не включенными в вакцину (т.е., кроме Microsporum canis или Microsporum gypsum).

    Кошкам также вводили 1 мл последней вакцины. Обработанные кошки проявляли устойчивость к инфекции стригущего лишая в течение 18 месяцев после введения вакцины.

    ПРИМЕР 2

    Вакцину получали из Microsporum canis, Microsporum gypsum и Trichophyton mentagrophytes с использованием процедуры, описанной в Примере 1.

    5 мл последней вакцины введено крупному рогатому скоту. На дату подачи данной заявки весь обработанный крупный рогатый скот демонстрировал постоянную устойчивость к инфекции стригущего лишая в течение периода до 7 месяцев.

    ПРИМЕР 3

    Образец Microsporum canis выделяли, как описано в Примере 1. Затем образец Tbe использовали для инокуляции 10-мл флакона, содержащего SDB. Флакон инкубировали в течение 4 дней при 95 ° С. F., энергично встряхивая флакон один раз в течение каждого дня культивирования.

    Затем содержимое флакона добавляли в камеру для выращивания, содержащую 90 мл SDB. Камеру для выращивания инкубировали до достижения максимального роста при 95 ° С. F., энергично встряхивая камеру один раз в течение каждого дня культивирования.Когда был достигнут максимальный рост (приблизительно 4 дня), образец из камеры помещали на планшеты SD для проверки чистоты культуры.

    После того, как культура была определена как чистая, в камеру добавляли формальдегид, разбавленный лактатным раствором Рингера, так, чтобы конечная концентрация формальдегида в камере составляла 0,2% в общем объеме 400 мл. Затем культуре давали отстояться на 4 дня. Культуру высевали на чашки SD, чтобы увидеть, все ли грибы погибли.

    После того, как все грибы были уничтожены, культуру гомогенизировали с использованием блендера Oster в течение 5 минут при низкой температуре, следя за тем, чтобы блендер не перегревал и не нагревал гомогенизированную культуру. Затем гомогенизированным культурам давали постоять приблизительно 48 часов.

    Гомогенизированную культуру затем отсасывали через фильтр Whatman 4. Формальдегид, гель гидроксида алюминия и раствор лактатных рингеров добавляли к гомогенизированной культуре таким образом, чтобы конечная концентрация геля формальдегида и гидроксида алюминия в общем объеме 3000-4000 мл составляла 0.2% и 2%. соответственно. Этот раствор был последней вакциной.

    Кошек лечили последней вакциной в различных дозах в зависимости от возраста кошки. Взрослые кошки получали 1 мл, котятам 5-7 недель — 0,25 мл, котятам 9 недель — 0,5 мл. Примерно 95% обработанных кошек проявляли устойчивость к инфекции стригущего лишая в течение (на момент подачи настоящей заявки) до 8 месяцев. Также наблюдали, что введение этой последней вакцины беременной кошке придавало устойчивость к инфекции потомству беременности в течение периода приблизительно 4-5 недель.Никаких побочных эффектов в отношении беременности или потомства не наблюдалось.

    ПРИМЕР 4

    Четыре гомогенизированных и аспирированных культуры получали из Microsporum canis, Microsporum gypsum и Trichophyton mentagrophytes в соответствии с процедурой, описанной в Примере 3. Затем аспираты объединяли друг с другом и с формальдегидом, гелем гидроксида алюминия и лактатным раствором Рингера таким образом, чтобы конечная концентрация формальдегида и геля гидроксида алюминия в общем объеме 4000 мл составил 0.2% и 2% соответственно. Этот раствор был последней вакциной.

    Крупному рогатому скоту 5 мл. Весь обработанный крупный рогатый скот проявлял устойчивость к инфекции стригущего лишая в течение (на момент подачи настоящей заявки) до 8 месяцев.

    Из вышеизложенного для специалистов в данной области техники будет очевидно, что различные модификации в описанных выше способах могут быть выполнены без отклонения от сущности и объема изобретения. Соответственно, изобретение может быть воплощено в других конкретных формах без отступления от его сущности или существенных характеристик.Таким образом, настоящие варианты осуществления следует рассматривать во всех отношениях как иллюстративные, а не ограничивающие, причем объем изобретения указывается прилагаемой формулой изобретения, а не предшествующим описанием. и все изменения, которые подпадают под значение и диапазон эквивалентности формулы изобретения, поэтому предназначены для включения в нее.

    Дерматофитозов у ​​собак и кошек

    Дерматология, Insights in Dermatology

    Дерматофитозы имеют множество клинических проявлений, и поэтапный логический подход имеет решающее значение для правильной диагностики.

    Розанна МарселлаDVM, DACVD

    Доктор Марселла — сертифицированный ветеринарный дерматолог и профессор Университета Флориды. Она является автором более 150 рецензируемых статей и написала несколько книг ( Руководство по дерматологии лошадей, и Клинический подход к дерматологическим заболеваниям кошек, ) и участвовала во многих других в качестве автора или автора и редактора (например, BSAVA Manual дерматологии собак и кошек ). Она была президентом Американского колледжа ветеринарной дерматологии и соредактором журнала Veterinary Dermatology .

    Stock-Asso / shutterstock.com

    Дерматофиты — это патогенные грибы, вызывающие кожные заболевания у мелких животных и людей; они могут представлять серьезную проблему для животных из приютов и домашних животных, подвергшихся обширному воздействию внешней среды. Наиболее частые дерматофитные инфекции, диагностируемые у мелких животных, вызываются Microsporum canis , Microsporum gypseum и Trichophyton mentagrophytes , а наиболее распространенными источниками являются кошки ( M canis ), инфицированная почва ( M gypseum ). , и грызунов ( T mentagrophytes ). 1

    Хотя дерматофиты передаются при контакте с артроспорами, контакт с артроспорами не всегда приводит к возникновению инфекции. Устойчивость к инфекции связана с сильным клеточным ответом. 2 Инфекция с большей вероятностью разовьется у очень молодых, престарелых или находящихся в стрессе животных. 3 У кошек из приютов инфекции дерматофитами, отличными от M. canis , редки и, по-видимому, не представляют проблемы для лечения; большинство кошек излечиваются от микоза в течение 3 недель после лечения. 4

    КЛИНИЧЕСКИЕ ПРИЗНАКИ И ДИАГНОСТИКА

    Дерматофитозы имеют множество клинических проявлений. Поскольку дерматофиты кератинофилы, их мишенями являются волосы и ногти.

    Фолликулит

    Когда дерматофиты поражают волосы, они приводят к фолликулиту ( РИСУНОК 1 ). Инфекции проявляются в виде папул и пустул ( РИСУНОК 2 ), которые быстро разрываются, оставляя эпидермальные воротнички, круглые области алопеции ( РИСУНОК 3 ) и корки.Дифференциальный диагноз фолликулита включает стафилококковую инфекцию ( РИСУНОК 4 ) и, особенно у собак, демодекоз ( РИСУНОК 5 ). Таким образом, при обследовании собаки с признаками фолликулита проведите цитологическое исследование для поиска внутриклеточных бактерий и глубоких соскобов кожи, чтобы исключить демодекоз.

    По опыту автора, бактериальный фолликулит обычно встречается у собак чаще, чем инфекция дерматофитами; однако не делайте предположений и не пропускайте этапы диагностики.Дерматофития может представлять серьезную проблему для собак определенных пород, например, йоркширских терьеров. Очень важно пройти список дифференциальных диагнозов и проработать каждый случай в последовательной логической манере. Другие причины пустулезного заболевания (например, листовая пузырчатка), которые не ориентированы на фолликулы, также следует учитывать при обследовании пациентов с выпадением волос и образованием корок. Хороший начальный подход — сначала исключить причины фолликулита с помощью цитологического исследования, глубокого соскоба кожи и посева на грибок.

    Узелковые поражения

    Иногда дерматофиты случайно попадают в дерму (например, во время травмы), что приводит к тяжелой воспалительной реакции и развитию узлового поражения, называемого керионом. 5 Это узловое поражение обычно встречается на переносице собак, которые любят копать. Даже после смерти дерматофитов тяжелая воспалительная реакция может сохраняться. Еще одно проявление узловой болезни, вызываемой дерматофитами, — дерматофитная мицетома, также называемая псевдомицетомой.Эта необычная кожная / подкожная инфекция в основном встречается у персидских кошек и проявляется в виде узелков с дренажными путями, обычно на спине. Эти кошки обычно представлены, потому что они не реагируют на терапию антибиотиками.

    Для пациентов с узловыми поражениями важно определить, являются ли они результатом инфекционных агентов. Часто требуется биопсия для гистопатологии и посева, но также следует проводить цитологию, поскольку мазки-слепки могут быть диагностическими. 5

    Поражения ногтей

    Дерматофиты могут поражать подушечки стоп ( РИСУНОК 6 ) и ногти ( РИСУНОК 7 и 8 ).Ногти, инфицированные дерматофитами, становятся хрупкими и деформируются, особенно у собак с инфекцией M gypseum . 6

    Дифференциальный диагноз деформированных и ломких ногтей может включать системную волчаночную ониходистрофию или генетически унаследованные дистрофии, которые не являются иммуноопосредованными. При рассмотрении этих случаев, прежде чем рассматривать биопсию или другие инвазивные диагностические тесты, соберите образцы пораженных ногтей (например, кусочки ногтей) и отправьте их для посева на грибок.

    МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ

    В недавно опубликованном клиническом консенсусе по дерматофитии мелких животных после обзора текущей литературы был сделан вывод о том, что ни один диагностический тест не может быть признан золотым стандартом для диагностики дерматофитии. 1 Авторы заявляют, что диагноз ставится с использованием дополнительных методов, указывающих на активную инфекцию, таких как прямое исследование артроспор на инфицированных волосах и грибковая культура волос, собранных с помощью стерильной зубной щетки.

    Лампа Вуда

    Использование лампы Вуда по-прежнему рекомендуется в качестве средства скрининга, и сейчас принято считать, что большинство инфекций, вызываемых вирусом M. canis , флуоресцируют зеленым яблоком под лампой Вуда. В зависимости от исследования положительность колеблется от 91% до 100%; более высокий процент был обнаружен в исследованиях экспериментально индуцированной инфекции. 1 Способность к флуоресценции развивается после первой недели заражения и может сохраняться на кончиках волос после исчезновения инфекции. 1 Авторы согласованного документа пришли к выводу, что лампа Вуда — лучший инструмент для первоначального скрининга, чем для контроля эффективности лечения. 1 Врачам необходимо знать, как правильно использовать лампу Вуда. Обследование следует начинать с головы пациента, медленно двигаясь назад, держа лампу близко к коже (2–4 см), отличая яблочно-зеленую флуоресценцию волос при дерматофитии от ложной синей флуоресценции, которую можно увидеть с помощью скейлинга и некоторых продуктов для местного применения. . 1

    Грибковые культуры

    На протяжении десятилетий золотым стандартом диагностики дерматофитов были посевы грибов. Однако в действительности такой подход просто указывает на наличие или отсутствие спор на волосках. Успех этого подхода частично зависит от техники отбора проб и района, который был выбран для культивирования. Метод, широко описанный в литературе, — это метод зубной щетки, который может обнаруживать бессимптомных животных-носителей. В 2017 году Ди Маттиа и др.сообщили о важности правильного посева образцов на питательную среду для грибов. Прижимание зубной щетки к пластине — оптимальный способ максимизировать рост M canis и минимизировать рост загрязнений. 7

    Прямой экзамен

    Выщипывание волос по краям существующего поражения считается полезным для конкретного решения вопроса о том, может ли поражение быть вызвано дерматофитом, хотя выщипывание волос все же может привести к отрицательным результатам. 1 Предметные стекла с 10–20 выщипанными волосками в минеральном масле можно исследовать под микроскопом на предмет артроспор.

    Полимеразная цепная реакция

    В последние годы использование полимеразной цепной реакции (ПЦР) для диагностики дерматофитоза привлекло внимание, и результаты исследований различаются в зависимости от используемой ПЦР. В 2018 году Moriello et al. обнаружили, что количественная ПЦР (кПЦР) образцов грибковой культуры зубных щеток с очагами поражений у кошек из приюта является надежным тестом для подтверждения заболевания. 8 Результаты КПЦР и культуры грибов совпали в 94% случаев. КПЦР также правильно определила 2 кошек как незараженных. Микологическое излечение было правильно идентифицировано для 65,2% кошек с помощью анализа qPCR Microsporum видов и 84,8% с помощью анализа M canis .

    Cafarchia et al. сообщили о высокой точности одностадийной ПЦР для собак (площадь под кривой [AUC]> 90), но только средней точности для кошек (AUC = 78,6). 9 В том же исследовании вложенная ПЦР оказалась точной (AUC = 93.6) для образцов от кошек и достигла более высокой специфичности (94,1% и 94,4%) и чувствительности (100% и 94,9%) для образцов от собак и кошек, соответственно. Другое исследование, в котором сравнивали эффективность вложенной ПЦР с прямой микроскопией и культивированием, обнаружило, что степень согласия была выше для вложенной ПЦР и прямой микроскопии (94,4%), чем для культуры (83,3%). 10 Как и в случае с грибковыми культурами, положительный результат ПЦР не подтверждает активную инфекцию, и результаты необходимо интерпретировать в контексте клинических признаков.Недавнее исследование также показало, что ПЦР менее чувствительна, чем сообщалось ранее, но более специфична, что увеличивает риск получения ложноотрицательных результатов. 11

    ПРОЦЕДУРЫ

    Успешное лечение дерматофитоза у собак и кошек требует сочетания местного лечения, системного лечения и дезинфекции окружающей среды.

    Средства для местного применения

    Поскольку дерматофития передается при контакте с артроспорами, местная терапия является важным компонентом лечения.Местное лечение помогает ускорить разрешение инфекции и уменьшить распространение артроспор в окружающую среду.

    вырезка

    На протяжении десятилетий стрижка была необходимой частью лечения дерматофитоза; однако клипирование в настоящее время пересматривается, поскольку клипирование всего тела вызывает стресс, а обычные микротравмы кожи могут усугубить инфекцию. Таким образом, решение о том, нужно ли обрезать, следует решать в каждом конкретном случае; стрижка не требуется для животных с короткой шерстью. 1

    Дикие, шампуни и ополаскиватели

    В Соединенных Штатах по-прежнему рекомендуется использовать известково-серные растворы. Несколько исследований документально подтвердили эффективность накипи на основе серы с известью, и нанесение дважды в неделю более эффективно, чем один раз в неделю. 1,12-14 Падение остаточно действует на шерсть, тогда как шампуни более короткие. 13 По опыту автора, общими побочными эффектами известковой серы являются сухость и изменение цвета на желтый. Хотя в более ранних исследованиях сообщалось о потенциальном риске язв во рту у кошек, которые облизывают свою шерсть еще влажными, более новые исследования не подтвердили эти выводы, что повышает вероятность того, что в более ранних исследованиях использовались более концентрированные растворы. 1 Большинство современных рецептур известковой серы для ветеринарного использования содержат 97,8% насыщенной известковой серы, которая применяется при разбавлении 8 унций / галлон воды.

    Если клиенты возражают против запаха серного соуса, в Соединенных Штатах доступны другие варианты, включая шампуни и ополаскиватели. Среди шампуней ни хлоргексидин, ни миконазол по отдельности не считаются эффективным средством лечения. Наиболее эффективным местным лечением является комбинация миконазола и хлоргексидина, применяемая два раза в неделю. 15,16 Хотя врачи обычно считают, что хлоргексидин обладает противогрибковыми свойствами, эффективность хлоргексидина при дерматофитиях была низкой. 17

    Для местного применения Энилконазол также эффективен для лечения дерматофитоза у мелких животных 18 , но в настоящее время недоступен в США. В странах, где доступно полоскание с энилконазолом, оно считается очень эффективным средством местного применения против дерматофитии. 19 Хотя энилконазол обычно хорошо переносится, сообщалось, что он вызывает гиперсаливацию, мышечную слабость и незначительное повышение концентрации аланинаминотрансферазы (АЛТ) в сыворотке крови у персидских кошек. 16

    Эффективность шампуней, содержащих кетоконазол, для животных не оценивалась исследованиями in vivo. Исследования in vitro подтверждают эффективность кетоконазола, но клинических испытаний шампуня с кетоконазолом при дерматофитии у мелких животных опубликовано не было. 19,20

    Аналогичным образом, исследования in vivo не подтверждают использование местного климбазола для лечения дерматофитии у мелких животных. Исследования in vitro показали хорошую остаточную активность климбазола 0,5% с хлоргексидином. 19

    Было опубликовано только одно исследование тербинафина для местного применения , которое показало хорошие результаты. 20

    Системное лечение

    Идеальным выбором для системной терапии являются кератинофильные и липофильные препараты, накапливающиеся в коже и кератине.В настоящее время наиболее эффективными системными методами лечения собак и кошек являются пероральный итраконазол или пероральный тербинафин. 1

    Итраконазол имеет длительный период полувыведения у кошек 21 и большую склонность к накоплению в волосах и коже. Это свойство позволяет использовать пульс-терапию, что снижает стоимость терапии; ежедневное введение в течение 1 недели с последующей 1 неделей приема и 1 неделей перерыва показало клинический успех. 22 Другие начали режим пульса только после ежедневного приема препарата в течение 4 недель. 23 Наиболее часто используемая доза итраконазола для собак и кошек составляет 5 мг / кг один раз в сутки. Поскольку итраконазол влияет на цитохром P450, важно учитывать лекарственные взаимодействия и уменьшать дозы других лекарств, если это взаимодействие влияет на их метаболизм (например, циклоспорин).

    Следует избегать составных формулировок итраконазола; несколько исследований показали, что составные составы имели субтерапевтическую ценность для леченных животных. 24,25 Общий итраконазол, кажется, лучше, хотя терапевтический мониторинг полезен, потому что концентрация может сильно варьироваться. 23 Если отмечается неэффективность лечения, перейдите на продукт, разработанный для людей, Sporanox (Janssen Pharmaceuticals, janssen.com). Также обратите внимание, что при использовании в более высоких дозах итраконазол, как сообщается, вызывает васкулит у собак. 26 Клиницисты должны учитывать возможность этого побочного эффекта при использовании этого лекарства, хотя высокие дозы обычно применяются при системных микозах и не рекомендуются при дерматофитиях. Жидкий состав (Итрафунгол; Эланко, Эланко.com) доступен для кошек. Сообщенные побочные эффекты итраконазола включают повышение ферментов печени и анорексию у собак, а также снижение потребления пищи, депрессию и повышенные концентрации АЛТ в сыворотке крови у кошек. 1

    Тербинафин очень кератинофилен и накапливается в волосах, 27 позволяет проводить пульс-терапию, что снижает стоимость и снижает побочные эффекты. Тербинафин обладает отличной активностью против дерматофитов, и одно исследование показало, что он эффективен и может представлять собой подходящую и более дешевую альтернативу для кошек из приютов. 14 Обычно используемый диапазон доз тербинафина составляет 20 мг / кг от 14 до 40 мг / кг; 28 эффективность увеличивается при более высоких дозах. Хотя тербинафин не оказывает такого же действия на цитохром P450, как азолы, его метаболизм в значительной степени затрагивает печень; при длительном лечении может потребоваться мониторинг показателей печени.

    Кетоконазол эффективен против дерматофитов, хотя он не так хорош, как итраконазол или тербинафин.Кетоконазол применялся у кошек; 29 однако, поскольку он обычно плохо переносится и часто вызывает тошноту и анорексию, лучше оставить это лекарство для собак. Кетоконазол обычно назначают собакам в дозе 5 мг / кг перорально каждые 12 часов, и его лучше всего вводить с пищей, чтобы минимизировать побочные эффекты и увеличить абсорбцию.

    Флуконазол имеет низкую активность против дерматофитов in vitro 30 и больше не рекомендуется для лечения дерматофитоза.Флуконазол также растворим в воде и не обладает такой же способностью, как итраконазол и кетоконазол, накапливаться в коже и кератине.

    Гризеофульвин исторически использовался для лечения дерматофитоза, но теперь доступны более безопасные и эффективные варианты. Таким образом, гризеофульвин редко используется в качестве лечебного средства.

    Луфенурон ранее рассматривался как возможное лечение, но исследования не показали его эффективности. 31,32 Следовательно, луфенурон не следует рассматривать как вариант лечения.

    Вакцины не предотвращают развитие дерматофитии 33 и поэтому не должны использоваться для этой цели.

    Обеззараживание окружающей среды

    Обеззараживание окружающей среды — основная часть лечения дерматофитоза. Это также сводит к минимуму ложноположительные результаты культивирования грибов. Хотя разделение животных с целью сведения к минимуму заражения 34 пропагандировалось на протяжении десятилетий, заключение необходимо проводить с осторожностью, поскольку это может быть очень стрессовым, особенно для молодых животных. 1 Таким образом, продолжительность изоляции должна быть сведена к минимуму до уровня, необходимого для обеззараживания окружающей среды. Потребность в длительной изоляции может быть уменьшена за счет еженедельной очистки и использования местной терапии.

    Исследования показали, что еженедельная очистка очень эффективна для удаления инфекционных артроспор. 35,36 Самая важная часть процесса дезактивации — это жесткая чистка, которая включает удаление мусора и волос. Чистку можно производить с помощью бытовых моющих средств, отпускаемых без рецепта. 37 Твердые поверхности можно продезинфицировать бытовым отбеливателем с концентрацией 1: 100 или ускоренной перекисью водорода. 37,38 Машинная стирка мягких тканей должна выполняться с использованием самого длительного цикла, чтобы максимально удалить споры.

    МОНИТОРИНГ УСПЕХА ЛЕЧЕНИЯ

    Клиническое излечение не всегда приравнивается к микологическому излечению. Таким образом, повторный рост волос и клинический внешний вид пациента могут быть недостаточными критериями для принятия решения о продолжительности лечения. В настоящее время рекомендуется, чтобы мониторинг терапии и установление того, полностью ли пациент излечился, основывались на сочетании устранения клинических признаков и отрицательного результата посева на грибок. 1 Степень инфицирования можно контролировать путем еженедельного посева. 1

    Мертвые грибковые организмы все еще могут быть обнаружены с помощью ПЦР. Таким образом, положительный результат ПЦР вместе с исчезновением признаков может указывать на то, что у пациента все еще есть споры на шерсти, а не настоящая инфекция. Например, пациенты могут собирать споры в зараженной среде, хотя у них выработался иммунитет и они больше не инфицированы. Эти животные могут представлять собой источник инфекции для окружающих их людей, и может потребоваться дальнейшая дезактивация окружающей среды.Грибковые культуры легко доступны на практике и могут помочь в мониторинге лечения. В случае сомнений можно повторить посев на грибок, чтобы убедиться, что результаты действительно отрицательные.

    Длинношерстные кошки склонны к субклиническим дерматофитиям 39 и поэтому являются потенциальными носителями. При вспышке дерматофитоза в доме с несколькими кошками необходимо культивировать каждую кошку, чтобы определить, какие из них действительно отрицательны, а какие клинически нормальны, но имеют артроспоры на своей шерсти и потенциально могут стать источником инфекции для других. 40

    РЕЗЮМЕ

    Дерматофитоз — это зоонозное, но излечимое заболевание. При обследовании пациентов с фолликулитом решающее значение имеет пошаговый логический подход для постановки правильного диагноза. Диагноз может быть поставлен на основании сочетания клинических признаков и положительных результатов посева на грибок. При отсутствии клинических признаков положительные результаты ПЦР или посева могут просто указывать на присутствие артроспор на шерсти без активной инфекции. Поскольку дерматофиты не являются частью обычной флоры, источник артроспор должен быть идентифицирован.Для быстрого выявления инфекции M. canis по-прежнему рекомендуется обследование с помощью лампы Вуда. Большинству пораженных пациентов требуется сочетание местного и системного лечения. Наиболее эффективными пероральными препаратами являются итраконазол и тербинафин, которые можно комбинировать с известковыми серными каплями для местного применения дважды в неделю и / или шампунями, содержащими как миконазол, так и хлоргексидин. Установление того, полностью ли вылечен пациент, должно подтверждаться сочетанием разрешения клинических признаков и отрицательного посева.

    Ссылки

    1. Мориелло К.А., Койнер К., Патерсон С., Миньон Б. Диагностика и лечение дерматофитоза у собак и кошек: Клинические рекомендации Всемирной ассоциации ветеринарной дерматологии. Ветеринарный дерматол . 2017; 28 (3): 266 – e68.

    2. DeBoer DJ, Moriello KA. Гуморальные и клеточные иммунные ответы на Microsporum canis при естественном дерматофитозе кошек.
    J Med Vet Mycol . 1993. 31 (2): 121–132.

    3.ДеТар Л.Г., Дубровский В., Скарлетт Дж. Описательная эпидемиология и тестовые характеристики кошек с диагнозом Microsporum canis dermatophytosis в приюте для животных на северо-западе США. J Feline Med Surg . 2019; 21 (12): 1198–1205.

    4. Мориелло К.А., Стунтбек Р., Маллен Л. Trichophyton видов и Microsporum gypseum инфекция и носительство фомита у кошек из трех приютов для животных: серия ретроспективных случаев. J Feline Med Surg .2020; 22 (4): 391–394.

    5. Корнелиани Л., Персико П., Коломбо С. Узловой дерматофитоз собак (керион): 23 случая. Ветеринарный дерматол . 2009. 20 (3): 185–190.

    6. Моретти А., Агнетти Ф., Манчианти Ф. и др. Дерматофитии животных: эпидемиологические, клинические и зоонозные аспекты. G Ital Dermatol Venereol. 2013; 148: 563–572.

    7 Ди Маттиа Д., Фондати А., Монако М. и др. Сравнение двух методов посева на культуру Microsporum canis с использованием метода взятия проб с помощью зубной щетки. Ветеринарный дерматол . 2019; 30 (1): 60 – e17.

    8. Moriello KA, Leutenegger CM. Использование коммерческого анализа количественной ПЦР у 52 кошек из приюта с высоким риском для выявления дерматофитии и микологического излечения. Vet Dermatol. 2018; 29 (1): 66 – e26.

    9. Cafarchia C, Gasser RB, Figueredo LA, et al. Улучшенный молекулярный диагностический тест на дерматофитию собак и кошек. Med Mycol. 2013; 51 (2): 136–143.

    10. Пири Ф., Махмудабади А.З., Рона А. и др.Оценка вложенной ПЦР пан-дерматофитов по сравнению с обычными методами прямого обнаружения и идентификации агентов дерматофитоза у животных. Микозы. 2018; 61 (11): 837–844.

    11. Frost K, Schick A, Mount B. Ретроспективный анализ соответствия внутренней культуры дерматофитов и коммерческого КПЦР из 16 направлений дерматологии в США, 2018–2019 гг. Резюме, представленное на виртуальном Североамериканском форуме ветеринарной дерматологии; 2021 г. 21–24 апреля.

    12. Мориелло К., Койнер К., Триммер А. и др. Лечение кошек из приютов пероральным тербинафином и одновременным промыванием известковой серой. Ветеринарный дерматол . 2013. 24 (6): 618–620.

    13. Ньюбери С., Мориелло К., Вербрюгге М., Томас С. Использование известковой серы и итраконазола для лечения кошек из приюта, естественно инфицированных Microsporum canis , в дополнительном помещении: испытание в открытом поле. Ветеринарный дерматол . 2007. 18 (5): 324–331.

    14. Мориелло К., Койнер К., Триммер А. и др.Лечение кошек из приютов пероральным тербинафином и одновременным промыванием известковой серой. Vet Dermatol. 2013; 24 (6): 618–620.

    15. Мориелло К.А. Эффективность in vitro шампуней, содержащих миконазол, кетоконазол, климбазол или ускоренную перекись водорода, против видов Microsporum canis и Trichophyton . J Feline Med Surg . 2017; 19 (4): 370–374.

    16. Мориелло К.А. Непосредственная и остаточная противогрибковая активность соединений, используемых для всего тела и адъювантной местной терапии против Microsporum canis : исследование in vitro. Vet Dermatol. 2020; 31 (4): 272 – e64.

    17. DeBoer DJ, Moriello KA. Неспособность двух местных препаратов повлиять на течение экспериментально вызванного дерматофитоза у кошек. ЯВМА . 1995. 207 (1): 52–57.

    18. Hnilica KA, Medleau L. Оценка местного применения энилконазола для лечения дерматофитии в персидском питомнике. Ветеринарный дерматол . 2002. 13 (1): 23–28.

    19. Мориелло К.А. Лечение дерматофитоза у собак и кошек: обзор опубликованных исследований. Ветеринарный дерматол . 2004. 15 (2): 99–107.

    20. Хё-Сын, Тэ-Ён К., Сук-Хи Х., Чангбайг Х. Оценка терапевтической эффективности медицинского шампуня, содержащего гидрохлорид тербинафина и хлоргексидин, у собак с дерматофитозом, осложненным бактериальной инфекцией. Дж Биомед Рес . 2013. 14 (3): 154–159.

    21. Лян Ц., Шань Ц., Чжун Дж. И др. Фармакокинетика и биодоступность перорального раствора итраконазола для кошек.
    J Feline Med Surg .2016; 18 (4): 310–314.

    22. Пульс С., Джонсон А., Янг К. и др. Эффективность перорального раствора итраконазола с использованием режима чередующейся недельной пульс-терапии для лечения кошек с экспериментальной инфекцией Microsporum canis . J Feline Med Surg . 2018; 20 (10): 869–874.

    23. Colombo S, Cornegliani L, Vercelli A. Эффективность итраконазола в качестве комбинированной непрерывной / импульсной терапии при дерматофитии кошек: предварительные результаты в девяти случаях. Vet Dermatol. 2001; 12 (6): 347–350.

    24. Моуби Д.И., Виттемор Дж. С., Фаулер Л. Е., Папич М.Г. Сравнение характеристик абсорбции этраконазола для перорального приема и составных композиций итраконазола у здоровых кошек. JAVMA. 2018; 252 (2): 195–200.

    25. Реншлер Дж., Альберс А., Синклер-Маклинг Х., Пшеница Л. Дж.. Сравнение комбинированного, генерического и инновационного итраконазола для собак и кошек. JAAHA. 2018; 54 (4): 195–200.

    26. Николс П.Р., Моррис Д.О., Бил К.М. Ретроспективное исследование кожного васкулита собак и кошек. Ветеринарный дерматол . 2001. 12 (5): 255–264.

    27. Фуст А.Л., Марселла Р., Акучевич Л.Х. и др. Оценка стойкости тербинафина в шерсти нормальных кошек после 14 дней ежедневной терапии. Ветеринарный дерматол . 2007. 18 (4): 246–251.

    28. Котник Т., Козух Эрзен Н., Кузнер Дж., Дробник-Косорок М. Обработка тербинафина гидрохлоридом Microsporum canis , экспериментально вызванного стригущим лишаем у кошек. Vet Microbiol. 2001; 83 (2): 161–168.

    29.Медло Л., Чалмерс С.А. Кетоконазол для лечения дерматофитии у кошек. ЯВМА . 1992. 200 (1): 77–8.

    30. Бегум Дж., Кумар Р. Распространенность дерматофитоза у животных и тестирование противогрибковой чувствительности изолированных видов Trichophyton и Microsporum . Троп Аним Здоровье Продукт . 2020; 53 (1): 3.

    31. ДеБоер Д. Д., Мориелло К. А., Блюм Дж. Л., Фольк Л. М.. Влияние лечения кошек люфенуроном на возникновение и течение инфекции Microsporum canis после контакта с инфицированными кошками. JAVMA. 2003; 222 (9): 1216–1220.

    32. Moriello KA, Deboer DJ, Schenker R, et al. Эффективность предварительного лечения луфенуроном для профилактики инфекции Microsporum canis на модели прямого местного заражения кошек. Vet Dermatol. 2004; 15 (6): 357–362.

    33. ДеБур Д. Д., Мориелло К. А., Блюм Дж. Л. и др. Безопасность и иммунологические эффекты после инокуляции кошек инактивированной и комбинированной живо-инактивированной дерматофитической вакциной. Am J Vet Res. 2002; 63 (11): 1532–1537.

    34. Ньюбери С., Мориелло К., Койнер К. и др. Ведение эндемичного дерматофитоза Microsporum canis в приюте открытого типа: полевое исследование. J Feline Med Surg. 2015; 17 (4): 342–347.

    35. Мориелло К.А., Кундер Д., Хондзо Х. Эффективность восьми коммерческих дезинфицирующих средств против Microsporum canis и Trichophyton spp. инфекционные споры на экспериментально загрязненной текстильной поверхности .Ветеринарный дерматол . 2013; 24 (6): 621–623, e151–152.

    36. Мориелло К.А. Механическое мытье мисок для кормов для домашних животных эффективно при обеззараживании Microsporum canis . Ветеринарный дерматол . 2019; 30 (5): 428 – e130.

    37. Мориелло К.А. Обеззараживание 70 домов приемных семей, подвергшихся воздействию зараженных Microsporum canis кошек: ретроспективное исследование. Vet Dermatol. 2019; 30 (2): 178 – e55.

    38. Мориелло К.А. Дезинфицирующие средства для питомников Microsporum canis и Trichophyton sp. Ветеринарная клиника, Международная .
    2015; 2015: 853–937.

    39. Sattasathuchana P, Bumrungpun C, Thengchaisri N. Сравнение субклинической дерматофитной инфекции у коротко- и длинношерстных кошек. Ветеринарный мир . 2020; 13 (12): 2798–2805.

    40. Мориелло К. Дерматофитоз кошек: аспекты, относящиеся к ведению болезней у одной или нескольких кошек. J Feline Med Surg . 2014. 16 (5): 419–431.

    Дерматофитоз у собак — симптомы, причины, диагностика, лечение, выздоровление, управление, стоимость

    После диагностики дерматофитоза целью лечения будет устранение грибков с кожи собаки, восстановление волос и кожи до нормального состояния и предотвращение распространения заражения других членов семьи.Следовательно, лечение дерматофитоза будет включать сочетание местной, системной терапии и дезинфекции загрязнения окружающей среды.

    Местное лечение

    Местные средства лучше всего наносить на все тело собаки в виде шампуней, ополаскивателей или окунаний. Ваш ветеринар может посоветовать подстричь или сбрить шерсть вашего питомца, чтобы облегчить лечение. Местное лечение обычно необходимо продолжать не менее 4-6 недель. Некоторые растворы для местного применения, которые оказались эффективными против дерматофитоза, включают сульфид серы, энилконазол, хлоргексидин + миконазол и хлоргексидин + кетоконазол.

    Отдельные поражения можно лечить точечно с помощью предписанной противогрибковой мази. После купания или нанесения мази на питомца обязательно вымойте руки и продезинфицируйте все поверхности, с которыми собака контактировала.

    Системное лечение

    Пероральные противогрибковые препараты, которые может назначить ваш ветеринар, включают гризеофульвин, тербинафин, луфенурон и итраконазол. Каждое из этих лекарств может иметь побочные эффекты, поэтому они должны находиться под строгим прямым ветеринарным наблюдением.Беременным животным никогда не следует давать противогрибковые препараты, поскольку они могут вызвать дефекты подстилки.

    Пероральное лечение обычно необходимо продолжать не менее шести недель. Ваша ветеринарная бригада возьмет посевы дерматофитоза через одну-две недели после начала лечения, чтобы определить, инфицирован ли ваш питомец. Обычно два последовательных отрицательных посева указывают на то, что ваш питомец больше не инфицирован.

    Санитарная обработка окружающей среды

    Споры грибов могут попадать в окружающую среду и заразить других животных или людей в доме.Жилую среду вашего питомца необходимо часто дезинфицировать, пылесосить и мыть шваброй. Кровать и игрушки вашего питомца необходимо мыть.

    Добавить комментарий

    Ваш адрес email не будет опубликован.